论文部分内容阅读
摘要
本文采用4种常用方法分别对福建田土中添加的二氯喹啉酸进行了提取，并采用高效液相色谱法对其添加回收率进行了测定，对比分析表明，当二氯喹啉酸添加浓度为1.25 μg/g时，方法二即氢氧化钠溶液提取、乙酸乙酯净化法回收率最高，约为70%，且杂质峰较小，基线平稳，峰形较对称；重复性高，两次生物学试验的平均回收率无显著差异，均略高于70%。方法一即乙腈磷酸水溶液提取、氯化钠净化法，回收率较高，但杂质峰较高，基线不平稳。方法三即硼砂甲醇溶液提取、二氯甲烷净化法，虽然杂质峰小、基线平稳、峰形较好、但回收率低，约为50%。方法四即甲醇磷酸水溶液直接提取法，因提取液难以在旋转蒸发仪中浓缩，因此未继续检测。综合结果表明，方法二最适用于福建省水稻田二氯喹啉酸的提取。
关键词
二氯喹啉酸；高效液相色谱法；土壤
中图分类号：
S 482.4
文献标识码：A
DOI：10.3969/j.issn.05291542.2017.04.023
Abstract
Quinclorac was extracted from field soil spiked with quinclorac in Fujian Province by four common methods and the recovery rate was evaluated by high performance liquid chromatography （HPLC）. The results showed that the second method was best for Fujian soil when quinclorac was spiked at 1.25 μg/g， in which the quinclorac was extracted with sodium hydroxide solution and purified with ethyl acetate. The second method had the highest recovery rate of about 70%， with small impurity peak， smooth baseline， symmetry shape of target peak and high repeatability. There was no difference between the average recovery rates in the two biological experiments with the second method. High recovery was also obtained when using the first method， in which the quinclorac was extracted with acetonitrile phosphoric acid solution and purified with sodium chloride， while the large impurity peak was presented with unstable baseline. The small impurity peak， smooth baseline， and good shape of target peak appeared when using the third method， in which the quinclorac was extracted with borax methanol solution and purified with dichloromethane， while the recovery was low with the rate of approximate 50%. The fourth method did not proceed because of difficulty in evaporation of the extraction solution in rotary evaporators， in which the quinclorac was extracted using methanol phosphoric acid solution without purification. Taken together， the second method was the most suitable method for quinclorac extraction in paddy field in Fujian Province.
Key words
quinclorac；high performance liquid chromatography；soil
二氯喹啉酸，即3，7二氯喹啉8羧酸，商品名為快杀稗、杀稗灵和神锄等，是德国巴斯夫公司在1984年开始推广的一种激素型喹啉酸类除草剂，对防除水稻田稗草具有特效选择性[1]，在水稻田广为应用。目前，已登记的有效成分含二氯喹啉酸的除草剂厂家及产品信息多达152条（中国农药信息网）。二氯喹啉酸通过单子叶植物根部吸收进入植物茎部，并在茎部诱导形成1氨基环丙烷1羧酸（ACC），随后ACC在ACC氧化酶的作用下转换成乙烯和氰化物，随着乙烯和氰化物的积累最终毒害植物起到杀灭植物的作用[2]。
二氯喹啉酸在水稻田防除稗草效果好，残效期长，但是残留的二氯喹啉酸对后茬轮作作物尤其是茄科和豆科植物容易产生药害[34]。在美国阿肯色州水稻田施用二氯喹啉酸后其附近水域二氯喹啉酸的残留量可达μg/L级[5]；利用测渗计模拟水稻田施用二氯喹啉酸的环境行为，结果表明95%二氯喹啉酸残留在水稻田30 cm表层土壤中[6]。1998年-2002年，广东省烟区出现了水稻田施用二氯喹啉酸引发后茬烟草大面积生长畸形[78]。有报道称土壤中危害烟株生长的二氯喹啉酸阈值为0.01 μg/mg[9]，而我国水稻田的二氯喹啉酸除草剂的使用量远高于该浓度。因此，检测农田土壤中的二氯喹啉酸残留量在生产中具有重要意义。 二氯喹啉酸的常用测定方法有液相色谱法[1011]和气相色谱法[7]，有些采用毛细管电泳法[12]，但应用很少。虽然气相色谱法的检测灵敏度高，但由于其前处理较为复杂，因此液相色谱法应用更为广泛。利用液相色谱法检测土壤中残留的二氯喹啉酸的方法很多，但是不同土壤样品适合的方法有差异[13]。本文采用高效液相色谱测定法，以福建田土为样本，对4种常用的从土壤中提取二氯喹啉酸的方法进行对比分析，以期获得一种最适用于福建省水稻田土壤的残留检测方法。
1材料与方法
1.1材料
供试土壤：取自福建农林大学未施用过二氯喹啉酸的试验田表层土壤。
1.2试剂
二氯喹啉酸标准品（99.9%）购自北京勤诚亦信科技开发有限公司；蒸馏水购自屈臣氏公司；色谱级甲醇（HPLC）购自默克公司；甲醇、磷酸、氢氧化钠、乙酸乙酯、硼砂、二氯甲烷均为分析纯，购自国药化学集团有限公司。
1.3仪器
高效液相色谱仪（Agilent 1100型 DAD检测器）；旋片真空泵（ZXZ1型，浙江黄岩天龙有限公司）；全自动高压灭菌锅（日本三洋公司）；离心机（Multifuge X1R，Thermo）；数控超声波清洗器（KQ500DB型，昆山市超声仪器公司）；鼓风干燥箱（精宏有限公司）；振荡器（SPH2102， Shiping）；电子天平（FA1204B， 上海精密仪器有限公司）。
1.4试验方法
1.4.1高效液相色谱法的检测条件
流动相为甲醇 0.5%乙酸（体积比为65∶35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；色谱分离柱为C18柱（4.6 nm×250 nm，5 μm，安捷伦）。在该条件下，二氯喹啉酸的出峰时间为3.7 min。
1.4.2制作标准曲线
以色谱级甲醇为溶剂配制500 μg/mL二氯喹啉酸标准储备溶液，再用色谱级甲醇稀释得到0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0和10.0 μg/mL二氯喹啉酸系列标准工作溶液。将标准溶液分别进样，每个浓度进样3次，求目标峰峰面积的平均值，将获得的峰面积与药液浓度作图，求相关系数。
1.4.3土壤样品的提取方法
采用下列4种方法分别提取土壤中的二氯喹啉酸，每种方法重复2次，每重复进样2次。
方法一：称取10 g土壤于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸藥液，于20℃ 150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入50 mL乙腈和0.05%磷酸水溶液混合液（V∶V=3∶2），超声20 min，然后置于摇床中振荡提取1.5 h （25℃，150 r/min），随后将混合液转移到离心管中，5 000 r/min离心5 min，取上清液转移到装有7 g氯化钠的具塞量筒中，剧烈振荡30 s，静置分层后取上清液。上清液用旋转蒸发仪浓缩至近干，再用6 mL蒸馏水超声溶解，过预处理好的C18固相萃取柱（预处理依次用6 mL甲醇和6 mL超纯水淋洗），控制流速小于0.5 mL/min；再用3 mL蒸馏水清洗浓缩瓶并过C18柱；然后用3 mL甲醇洗脱，重复2次，收集所有洗脱液，用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法二：参考郑雄志等[14]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，置于20℃ 150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入30 mL 0.05 mol/L氢氧化钠溶液，振荡提取2.5 h，5 000 r/min离心5 min；取上清液用磷酸调pH约为2.5，加入15 mL乙酸乙酯激烈振荡萃取2次，每次振荡5 min；收集合并乙酸乙酯相，用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法三：参考陈泽鹏等[15]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，于20℃150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入12 mL 0.05 mol/L的硼砂缓冲液和20 mL甲醇，于25℃摇床中振荡提取5 h，5 000 r/min离心5 min，取上清液用盐酸调pH值到1～2，加入10 mL二氯甲烷萃取3次，弃去水层，合并二氯甲烷相并用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法四：参考张倩等[11]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，置于20℃150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入30 mL甲醇和0.01%磷酸水溶液混合液（V∶V=3∶1），振荡提取1 h，将提取液转移到离心管中，于5 000 r/min离心5 min，取上清液用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
1.4.4提取方法的稳定性
将原浓度12.5 μg/mL及低浓度1.0 μg/mL二氯喹啉酸药液1 mL添加于土壤中，选择上述回收率最高的一种方法，再次测定不同浓度药剂的添加回收率，每个处理重复2次。
1.4.5数据分析
二氯喹啉酸的回收率按下面公式计算，其中A2和A1分别是不同处理提取的二氯喹啉酸浓度的峰面积和标准溶液二氯喹啉酸的峰面积。不同处理之间的回收率差异采用SPSS软件中的LSD方法进行比较。 回收率（%）=A2/A1×100。
2结果与分析
2.1标准曲线制作
按1.4.1的分离条件：流动相为甲醇 0.5%乙酸水（体积比为65：35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；二氯喹啉酸的出峰时间为3.7 min。根据该分离条件，测得在0.1～10 μL/mL之间二氯喹啉酸浓度与峰面积间的线性相关系数r为0.99；表明二氯喹啉酸浓度在0.1～10 μg/mL之间与响应值具有良好的线性关系（图1）。
2.2不同提取方法对二氯喹啉酸的分离情况
利用方法一、二和三提取土壤样品中的二氯喹啉酸，并采用1.4.1的液相色谱的检测条件可以有效地将二氯喹啉酸与土壤中的其他杂质分离开（图2）。其中，方法一的杂质含量较高，目标峰较小且峰形不对称；方法二杂质峰较小，目标峰形状较对称，峰度最高；方法三杂质峰小，但目标峰较小即回收率较低；方法四在提取过程中，由于最后浓缩一步很难在短时间内完成，放弃继续检测。综合认为方法二的提取方法效果最佳。
2.3不同提取方法对二氯喹啉酸的回收率
方法一、二和三对添加浓度为1.25 μg/g的二氯喹啉酸的回收率分别为66.13%、71.18%和49.29%（表1）。可以看出，不同方法的出峰时间均比较稳定；方法一和方法二的回收率高于方法三，但是方法二和方法三的重复性高于方法一。因此，综合认为方法二是最佳的提取方法。
2.4方法二回收率的稳定性
根据2.2和2.3试验结果可知方法二是最优的提取方法，因此通过再次测定原浓度的添加回收率及低浓度的添加回收率确定该方法的稳定性，结果表明相同浓度的两次生物学重复试验回收率没有差异，回收率稳定在70%以上。添加低浓度的二氯喹啉酸，其回收率为46.75%，显著低于高浓度的回收率。
3结论与讨论
本研究对福建土壤中的二氯喹啉酸进行分离的色谱条件为：流动相为甲醇 0.5%乙酸（体积比为65∶35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；色谱分离柱为C18柱（4.6 nm×250 nm，5 μm），采用该条件可以将土壤中的二氯喹啉酸和其他杂质分离开来。也有其他研究报道采用不同的流动相组分[11]，或者不同的甲醇乙酸比例[10，13]进行分离，但是共同点都是流动相为甲醇酸性水溶液，因此不同的试验条件和不同的样品，在应用分离条件前应进行测试，选用分离效果最优的方法。
在上述检测条件下，本研究使用的方法二，即氢氧化钠溶液提取、乙酸乙酯净化法回收率最高，约为70%，且杂质峰较小、基线平稳、峰形较对称，而且重复性高。当二氯喹啉酸浓度低至0.1 μg/g时，该方法回收率有所降低，但依然可达到50%左右。因此，本方法可作为检测田间土壤二氯喹啉酸残留量的参考方法。采用该方法提取不同土壤样品时，需要注意调节pH值，以保证离心过程杂质充分沉淀。
方法一，即乙腈磷酸水溶液提取、氯化钠净化法，虽然也有较高的回收率，但杂质峰也比较高，基线不平稳，同时在过C18固相萃取柱时，流速不同对回收率的影响极大，流速快的回收率远低于流速慢的，因此若采用此方法试验过程中应尽量减缓流速，以保证提取质量。方法三，即硼砂甲醇溶液提取、二氯甲烷净化法，虽然回收率低，约50%，但杂质峰小、基线平稳、峰形较好，如果是檢测二氯喹啉酸含量较高的样品时，也可考虑采用此方法。
参考文献
[1]Grossman K. Quinclorac belongs to a new class of highly selective auxin herbicides [J].Weed Science，1998，46（6）：707716.
[2]Grossmann K. News from old compounds： The mode of action of auxin herbicides [M]∥Voss G， Ramos G. Chemistry of crop protection： progress and prospects in science and regulation. WileyVCH Verlag GmbH
本文采用4种常用方法分别对福建田土中添加的二氯喹啉酸进行了提取，并采用高效液相色谱法对其添加回收率进行了测定，对比分析表明，当二氯喹啉酸添加浓度为1.25 μg/g时，方法二即氢氧化钠溶液提取、乙酸乙酯净化法回收率最高，约为70%，且杂质峰较小，基线平稳，峰形较对称；重复性高，两次生物学试验的平均回收率无显著差异，均略高于70%。方法一即乙腈磷酸水溶液提取、氯化钠净化法，回收率较高，但杂质峰较高，基线不平稳。方法三即硼砂甲醇溶液提取、二氯甲烷净化法，虽然杂质峰小、基线平稳、峰形较好、但回收率低，约为50%。方法四即甲醇磷酸水溶液直接提取法，因提取液难以在旋转蒸发仪中浓缩，因此未继续检测。综合结果表明，方法二最适用于福建省水稻田二氯喹啉酸的提取。
关键词
二氯喹啉酸；高效液相色谱法；土壤
中图分类号：
S 482.4
文献标识码：A
DOI：10.3969/j.issn.05291542.2017.04.023
Abstract
Quinclorac was extracted from field soil spiked with quinclorac in Fujian Province by four common methods and the recovery rate was evaluated by high performance liquid chromatography （HPLC）. The results showed that the second method was best for Fujian soil when quinclorac was spiked at 1.25 μg/g， in which the quinclorac was extracted with sodium hydroxide solution and purified with ethyl acetate. The second method had the highest recovery rate of about 70%， with small impurity peak， smooth baseline， symmetry shape of target peak and high repeatability. There was no difference between the average recovery rates in the two biological experiments with the second method. High recovery was also obtained when using the first method， in which the quinclorac was extracted with acetonitrile phosphoric acid solution and purified with sodium chloride， while the large impurity peak was presented with unstable baseline. The small impurity peak， smooth baseline， and good shape of target peak appeared when using the third method， in which the quinclorac was extracted with borax methanol solution and purified with dichloromethane， while the recovery was low with the rate of approximate 50%. The fourth method did not proceed because of difficulty in evaporation of the extraction solution in rotary evaporators， in which the quinclorac was extracted using methanol phosphoric acid solution without purification. Taken together， the second method was the most suitable method for quinclorac extraction in paddy field in Fujian Province.
Key words
quinclorac；high performance liquid chromatography；soil
二氯喹啉酸，即3，7二氯喹啉8羧酸，商品名為快杀稗、杀稗灵和神锄等，是德国巴斯夫公司在1984年开始推广的一种激素型喹啉酸类除草剂，对防除水稻田稗草具有特效选择性[1]，在水稻田广为应用。目前，已登记的有效成分含二氯喹啉酸的除草剂厂家及产品信息多达152条（中国农药信息网）。二氯喹啉酸通过单子叶植物根部吸收进入植物茎部，并在茎部诱导形成1氨基环丙烷1羧酸（ACC），随后ACC在ACC氧化酶的作用下转换成乙烯和氰化物，随着乙烯和氰化物的积累最终毒害植物起到杀灭植物的作用[2]。
二氯喹啉酸在水稻田防除稗草效果好，残效期长，但是残留的二氯喹啉酸对后茬轮作作物尤其是茄科和豆科植物容易产生药害[34]。在美国阿肯色州水稻田施用二氯喹啉酸后其附近水域二氯喹啉酸的残留量可达μg/L级[5]；利用测渗计模拟水稻田施用二氯喹啉酸的环境行为，结果表明95%二氯喹啉酸残留在水稻田30 cm表层土壤中[6]。1998年-2002年，广东省烟区出现了水稻田施用二氯喹啉酸引发后茬烟草大面积生长畸形[78]。有报道称土壤中危害烟株生长的二氯喹啉酸阈值为0.01 μg/mg[9]，而我国水稻田的二氯喹啉酸除草剂的使用量远高于该浓度。因此，检测农田土壤中的二氯喹啉酸残留量在生产中具有重要意义。 二氯喹啉酸的常用测定方法有液相色谱法[1011]和气相色谱法[7]，有些采用毛细管电泳法[12]，但应用很少。虽然气相色谱法的检测灵敏度高，但由于其前处理较为复杂，因此液相色谱法应用更为广泛。利用液相色谱法检测土壤中残留的二氯喹啉酸的方法很多，但是不同土壤样品适合的方法有差异[13]。本文采用高效液相色谱测定法，以福建田土为样本，对4种常用的从土壤中提取二氯喹啉酸的方法进行对比分析，以期获得一种最适用于福建省水稻田土壤的残留检测方法。
1材料与方法
1.1材料
供试土壤：取自福建农林大学未施用过二氯喹啉酸的试验田表层土壤。
1.2试剂
二氯喹啉酸标准品（99.9%）购自北京勤诚亦信科技开发有限公司；蒸馏水购自屈臣氏公司；色谱级甲醇（HPLC）购自默克公司；甲醇、磷酸、氢氧化钠、乙酸乙酯、硼砂、二氯甲烷均为分析纯，购自国药化学集团有限公司。
1.3仪器
高效液相色谱仪（Agilent 1100型 DAD检测器）；旋片真空泵（ZXZ1型，浙江黄岩天龙有限公司）；全自动高压灭菌锅（日本三洋公司）；离心机（Multifuge X1R，Thermo）；数控超声波清洗器（KQ500DB型，昆山市超声仪器公司）；鼓风干燥箱（精宏有限公司）；振荡器（SPH2102， Shiping）；电子天平（FA1204B， 上海精密仪器有限公司）。
1.4试验方法
1.4.1高效液相色谱法的检测条件
流动相为甲醇 0.5%乙酸（体积比为65∶35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；色谱分离柱为C18柱（4.6 nm×250 nm，5 μm，安捷伦）。在该条件下，二氯喹啉酸的出峰时间为3.7 min。
1.4.2制作标准曲线
以色谱级甲醇为溶剂配制500 μg/mL二氯喹啉酸标准储备溶液，再用色谱级甲醇稀释得到0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0和10.0 μg/mL二氯喹啉酸系列标准工作溶液。将标准溶液分别进样，每个浓度进样3次，求目标峰峰面积的平均值，将获得的峰面积与药液浓度作图，求相关系数。
1.4.3土壤样品的提取方法
采用下列4种方法分别提取土壤中的二氯喹啉酸，每种方法重复2次，每重复进样2次。
方法一：称取10 g土壤于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸藥液，于20℃ 150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入50 mL乙腈和0.05%磷酸水溶液混合液（V∶V=3∶2），超声20 min，然后置于摇床中振荡提取1.5 h （25℃，150 r/min），随后将混合液转移到离心管中，5 000 r/min离心5 min，取上清液转移到装有7 g氯化钠的具塞量筒中，剧烈振荡30 s，静置分层后取上清液。上清液用旋转蒸发仪浓缩至近干，再用6 mL蒸馏水超声溶解，过预处理好的C18固相萃取柱（预处理依次用6 mL甲醇和6 mL超纯水淋洗），控制流速小于0.5 mL/min；再用3 mL蒸馏水清洗浓缩瓶并过C18柱；然后用3 mL甲醇洗脱，重复2次，收集所有洗脱液，用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法二：参考郑雄志等[14]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，置于20℃ 150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入30 mL 0.05 mol/L氢氧化钠溶液，振荡提取2.5 h，5 000 r/min离心5 min；取上清液用磷酸调pH约为2.5，加入15 mL乙酸乙酯激烈振荡萃取2次，每次振荡5 min；收集合并乙酸乙酯相，用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法三：参考陈泽鹏等[15]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，于20℃150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入12 mL 0.05 mol/L的硼砂缓冲液和20 mL甲醇，于25℃摇床中振荡提取5 h，5 000 r/min离心5 min，取上清液用盐酸调pH值到1～2，加入10 mL二氯甲烷萃取3次，弃去水层，合并二氯甲烷相并用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
方法四：参考张倩等[11]的方法。称取10 g土壤样品于150 mL三角瓶中，加入1 mL 12.5 μg/mL的二氯喹啉酸药液，置于20℃150 r/min条件下摇床内振荡摇匀24 h。然后加入30 mL甲醇和0.01%磷酸水溶液混合液（V∶V=3∶1），振荡提取1 h，将提取液转移到离心管中，于5 000 r/min离心5 min，取上清液用旋转蒸发仪于35℃下浓缩至近干，最后用1.0 mL色谱级甲醇定容，过0.22 μm滤膜，收集滤液供液相色谱测定。
1.4.4提取方法的稳定性
将原浓度12.5 μg/mL及低浓度1.0 μg/mL二氯喹啉酸药液1 mL添加于土壤中，选择上述回收率最高的一种方法，再次测定不同浓度药剂的添加回收率，每个处理重复2次。
1.4.5数据分析
二氯喹啉酸的回收率按下面公式计算，其中A2和A1分别是不同处理提取的二氯喹啉酸浓度的峰面积和标准溶液二氯喹啉酸的峰面积。不同处理之间的回收率差异采用SPSS软件中的LSD方法进行比较。 回收率（%）=A2/A1×100。
2结果与分析
2.1标准曲线制作
按1.4.1的分离条件：流动相为甲醇 0.5%乙酸水（体积比为65：35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；二氯喹啉酸的出峰时间为3.7 min。根据该分离条件，测得在0.1～10 μL/mL之间二氯喹啉酸浓度与峰面积间的线性相关系数r为0.99；表明二氯喹啉酸浓度在0.1～10 μg/mL之间与响应值具有良好的线性关系（图1）。
2.2不同提取方法对二氯喹啉酸的分离情况
利用方法一、二和三提取土壤样品中的二氯喹啉酸，并采用1.4.1的液相色谱的检测条件可以有效地将二氯喹啉酸与土壤中的其他杂质分离开（图2）。其中，方法一的杂质含量较高，目标峰较小且峰形不对称；方法二杂质峰较小，目标峰形状较对称，峰度最高；方法三杂质峰小，但目标峰较小即回收率较低；方法四在提取过程中，由于最后浓缩一步很难在短时间内完成，放弃继续检测。综合认为方法二的提取方法效果最佳。
2.3不同提取方法对二氯喹啉酸的回收率
方法一、二和三对添加浓度为1.25 μg/g的二氯喹啉酸的回收率分别为66.13%、71.18%和49.29%（表1）。可以看出，不同方法的出峰时间均比较稳定；方法一和方法二的回收率高于方法三，但是方法二和方法三的重复性高于方法一。因此，综合认为方法二是最佳的提取方法。
2.4方法二回收率的稳定性
根据2.2和2.3试验结果可知方法二是最优的提取方法，因此通过再次测定原浓度的添加回收率及低浓度的添加回收率确定该方法的稳定性，结果表明相同浓度的两次生物学重复试验回收率没有差异，回收率稳定在70%以上。添加低浓度的二氯喹啉酸，其回收率为46.75%，显著低于高浓度的回收率。
3结论与讨论
本研究对福建土壤中的二氯喹啉酸进行分离的色谱条件为：流动相为甲醇 0.5%乙酸（体积比为65∶35）；流速为1.0 mL/min；柱温为40℃；检测波长为240 nm；进样体积为10 μL；色谱分离柱为C18柱（4.6 nm×250 nm，5 μm），采用该条件可以将土壤中的二氯喹啉酸和其他杂质分离开来。也有其他研究报道采用不同的流动相组分[11]，或者不同的甲醇乙酸比例[10，13]进行分离，但是共同点都是流动相为甲醇酸性水溶液，因此不同的试验条件和不同的样品，在应用分离条件前应进行测试，选用分离效果最优的方法。
在上述检测条件下，本研究使用的方法二，即氢氧化钠溶液提取、乙酸乙酯净化法回收率最高，约为70%，且杂质峰较小、基线平稳、峰形较对称，而且重复性高。当二氯喹啉酸浓度低至0.1 μg/g时，该方法回收率有所降低，但依然可达到50%左右。因此，本方法可作为检测田间土壤二氯喹啉酸残留量的参考方法。采用该方法提取不同土壤样品时，需要注意调节pH值，以保证离心过程杂质充分沉淀。
方法一，即乙腈磷酸水溶液提取、氯化钠净化法，虽然也有较高的回收率，但杂质峰也比较高，基线不平稳，同时在过C18固相萃取柱时，流速不同对回收率的影响极大，流速快的回收率远低于流速慢的，因此若采用此方法试验过程中应尽量减缓流速，以保证提取质量。方法三，即硼砂甲醇溶液提取、二氯甲烷净化法，虽然回收率低，约50%，但杂质峰小、基线平稳、峰形较好，如果是檢测二氯喹啉酸含量较高的样品时，也可考虑采用此方法。
参考文献
[1]Grossman K. Quinclorac belongs to a new class of highly selective auxin herbicides [J].Weed Science，1998，46（6）：707716.
[2]Grossmann K. News from old compounds： The mode of action of auxin herbicides [M]∥Voss G， Ramos G. Chemistry of crop protection： progress and prospects in science and regulation. WileyVCH Verlag GmbH