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摘要 羊恶性水肿病属于羊的常见病，近些年来逐渐被人们重视。在临床上，结合临床症状和实验室检验不难诊断该病。介绍了临床上一起羊恶性水肿病的诊断、治疗和防治，以供同行参考。
关键词 羊；恶性水肿病；诊断；治疗
中图分类号 S858.26 文献标识码 B 文章编号 1007-5739（2016）03-0313-02
Academy of Animal Husbandry and Veterinary Institute）
Abstract Malignant edema disease belong to the common diseases of sheep. In recent year，in combination with clinical symptoms and laboratory examination，malignant edema disease is not difficult to diagnose. Diagnosis，treatment and prevention on a case of sheep malignant edema disease were clinically introduced，so as to provide the reference for colleague.
Key words sheep；malignant edema disease；diagnosis；treatment
羊惡性水肿病由梭菌引起，具有创伤性、急性等特点，一旦染病就会在创伤部位出现急性的炎性水肿，然后水肿会快速蔓延至周围的健康组织，一般发病的时候会有发热症状和全身性毒血症[1]。该病一般呈散发流行，在个别地区，会暴发大面积流行。2014年6月，笔者参与诊治了一起羊恶性水肿的病例，现介绍如下。
1 发病情况
新疆昌吉地区吉木萨尔县泉子街镇某养羊户饲养绵羊50只，2014年6月，剪完羊毛5 d后，发现有个别羊只出现异常情况，如精神沉郁、食欲不振等，2 d内死亡5只。调查发现，该地区以前未见此类似疾病发生。本群羊发病24只，死亡5只，发病率48.0%，死亡率为20.8%。
2 临床症状
病羊精神沉郁，不食。发现其中几只羊在剪毛的过程中对皮肤造成不同程度的剪伤，伤口周围发生弥漫性炎性水肿。创口常渗出不洁的红棕色浆液，发出恶臭。按压水肿部位，有的坚实，有的柔软，疼痛或无痛感。病情严重的全身发热，呼吸困难，黏膜充血、发绀，腹泻。临床检查发现，T 41 ℃，P 110次/min，R 65次/min。
3 剖检变化
剖检病死羊，可以发现其尸体有部分皮下有黄色液体浸润，腐臭味且有气泡，肌肉的颜色为灰白色或者暗褐色。腹腔和心包中的积液量很大。脾肿大，肝、肾浑浊肿大，有灰黄色病灶[2-3]。
4 实验室检查
4.1 组织触片镜检
取肝、胸水、肾触片，对其进行革兰氏染色，镜检时可以看到有单个、2个相连及少数3～4个短链排列、菌体周围有荚膜、中央有芽孢的革兰氏阳性大的杆菌。
4.2 细菌培养
从病羊的心、肝、脾、肺、肾上取病料，并将其划线接种在4种培养基上，分别为麦康凯、SS琼脂、伊红美蓝、血液培养基和营养琼脂培养基，分别用需厌法及CO2烛缸厌氧法于37℃恒温箱培养。在需氧条件下培养48 h，SS琼脂及麦康凯培养基上的菌落生长较为贫脊，直径约1 mm；营养琼脂培养基、血清培养基、伊红美蓝琼脂培养基上长出的菌落颜色分别为淡灰色、淡灰色、粉红色，菌落状态分别为珍珠状湿润隆起、双重溶血环、线状，直径分别为1～2、2～3、1～3 mm。将其在厌氧环境下培养48 h后，发现这4种培养基上都长出了丰盛的菌落，其中血液培养基上出现直径4～5 mm的双重溶血环，在室温中放置6～7 h后变成淡绿色。取该双重溶血环的典型纯培养物少许，接种10%新鲜羊血清琼脂培养基，厌氧培养18 h后，可见圆盘状、中尖微隆起的淡灰色湿润菌落。
无菌吸取0.1 mL的胸腔积液，接种厌氧肝片肉汤，37 ℃培养12 h，肉汤均匀混浊，呈粉红色，管底形成灰白色沉淀，液面长有白色菌膜。继续培养，肉汤澄明，液面产生多数小气泡，气体pH值5.6，开盖后闻到酸臭味。
4.3 运动力检查
细菌运动力悬滴标本检查，结果为无运动力。
4.4 毒力测定试验
取厌氧肝片肉汤培养物5 mL，经3 000 r/min离心30 min，取澄明肉汤以100 ℃水浴30 min灭活，腹腔接种小鼠2只，1 mL/只，96 h后相继出现重度中毒症状，食欲减少、肌肉震颤，死前口腔流涎，四肢呈划水样。
4.5 生化试验
取纯化好的培养物分别接种于葡聚糖、乳糖、麦芽糖、甘露醇、蔗糖、果糖。结果显示：该菌分解葡萄糖、乳糖、麦芽糖、蔗糖和果糖，产酸产气，不发酵甘露醇。
4.6 动物回归试验
试验组每只小鼠皮下接种厌氧肝片肉汤培养物0.3 mL，对照组每只皮下接种生理盐水0.3 mL。5 h内试验鼠均相继发病死亡。然后将死鼠置恒箱内48 h，取出后剖检可见皮下水肿、气肿，胸腹腔积液，肝包膜下有小气泡，肝、肾组织切面呈疏松海绵状；取肝、胸腔积液涂片，革兰氏染色，镜检可见上述类似的革兰氏阳性、有荚膜、具有双重溶血特性的梭状芽孢杆菌。对照组均健活。
5 诊断
本病例依据流行病学（剪完羊毛后发病）、临床检查（伤口周围急性水肿）、剖检病变和实验室检查结果（分离到梭状芽孢杆菌）可确诊为羊恶性水肿病[4-5]。
6 治疗
此次发病主要是剪羊毛过程中外伤引起的发病，因此治疗过程中须全身治疗与局部处理相结合。一是隔离病羊，每只肌内注射：①头孢噻呋5 mg/kg，或盐酸林克霉素30 mg/kg；②硫酸庆大霉素0.5万U/kg，或硫酸阿米卡星10 mg/kg；③地塞米松2～5 mg；④维生素C 0.5 g，2次/d，连用5～7 d。二是局部处理：切开肿胀之患部，清除腐败坏死组织和渗出液，用0.1%高锰酸钾或3%双氧水充分冲洗，然后在肿胀部边界处分6～10点注射青霉素，每点5万～10万U。1次/d，连续注射2～3次。
7 结语
此次发病与羊的年龄、品种无关，主要是由于剪毛引起的外伤后消毒不严而继发本病。因此，对于该病的预防，要注意防止外伤，手术或接产时要注意无菌操作或术后护理，特别是在剪毛季节，要做好剪伤后的消毒工作。同时，动物死尸应深埋或烧毁，污染物品要彻底消毒。
本病应与气肿疽（俗称黑腿病或鸣疽）相鉴别。气肿疽主要侵害肌肉组织，肌肉丰富的部位发生气性炎性，中心坏死变黑，压之有捻发音，有特征性的海绵状坏死肌肉[6]。
本病的病原是多种梭菌，主要是腐败梭菌、产气荚膜杆菌、偌氏梭菌和溶组织梭菌，均为革兰氏阳性厌氧大杆菌。在兽医临床上，羊的梭菌病（羊快疫、羊猝疽、羊肠毒血症和羔羊痢疾）也是由梭菌引起的，因此在诊断过程，实验室分离出来的梭菌一定要结合流行病学和临床症状进行确诊[7]。
对于本病的治疗，抗菌药物可选用青霉素类、林可胺类、四环素类等，有条件应进行药敏试验，结合药敏试验结果选择针对性的敏感药物，避免耐药性的产生。另外，对于孕羊和羔羊来说，选择林可胺类要慎重[3]。
8 参考文献
[1] 行庆华，王小民，黄炯，等.乡村兽医临床技能培训教材[M].北京：中国农业出版社，2012：193-194.
[2] 陈世军，杨国滨，王力俭，等.新疆常见羊病的诊断与治疗[M].乌鲁木齐：新疆美术摄影出版社，2012：41-43.
[3] 陈世军，黄炯，杨会国，等.抗感染药物兽医临床应用[M].北京：中国农业出版社，2014：158.
[4] 刘祥坤，阳作锋，明邦贵，等.一例兔大肠杆菌病与魏氏梭菌病混合感染的诊疗[J].福建畜牧兽医，2011（4）：63.
[5] 杨扬，艾必燕，樵星芳，等.实验家兔魏氏梭菌病的诊治[J].重庆中草药研究，2010（2）：24-26.
[6] 还庶，蔡玉书，姚龙涛，等.奶山羊恶性水肿病的调查研究（一报）[J].中兽医医药杂志，1997（5）：3-5.
[7] 杨秀环，李秀敏，郑瑞峰，等.绵羊恶性水肿病的诊疗报告[J].当代畜牧，2004（1）：22.
关键词 羊；恶性水肿病；诊断；治疗
中图分类号 S858.26 文献标识码 B 文章编号 1007-5739（2016）03-0313-02
Academy of Animal Husbandry and Veterinary Institute）
Abstract Malignant edema disease belong to the common diseases of sheep. In recent year，in combination with clinical symptoms and laboratory examination，malignant edema disease is not difficult to diagnose. Diagnosis，treatment and prevention on a case of sheep malignant edema disease were clinically introduced，so as to provide the reference for colleague.
Key words sheep；malignant edema disease；diagnosis；treatment
羊惡性水肿病由梭菌引起，具有创伤性、急性等特点，一旦染病就会在创伤部位出现急性的炎性水肿，然后水肿会快速蔓延至周围的健康组织，一般发病的时候会有发热症状和全身性毒血症[1]。该病一般呈散发流行，在个别地区，会暴发大面积流行。2014年6月，笔者参与诊治了一起羊恶性水肿的病例，现介绍如下。
1 发病情况
新疆昌吉地区吉木萨尔县泉子街镇某养羊户饲养绵羊50只，2014年6月，剪完羊毛5 d后，发现有个别羊只出现异常情况，如精神沉郁、食欲不振等，2 d内死亡5只。调查发现，该地区以前未见此类似疾病发生。本群羊发病24只，死亡5只，发病率48.0%，死亡率为20.8%。
2 临床症状
病羊精神沉郁，不食。发现其中几只羊在剪毛的过程中对皮肤造成不同程度的剪伤，伤口周围发生弥漫性炎性水肿。创口常渗出不洁的红棕色浆液，发出恶臭。按压水肿部位，有的坚实，有的柔软，疼痛或无痛感。病情严重的全身发热，呼吸困难，黏膜充血、发绀，腹泻。临床检查发现，T 41 ℃，P 110次/min，R 65次/min。
3 剖检变化
剖检病死羊，可以发现其尸体有部分皮下有黄色液体浸润，腐臭味且有气泡，肌肉的颜色为灰白色或者暗褐色。腹腔和心包中的积液量很大。脾肿大，肝、肾浑浊肿大，有灰黄色病灶[2-3]。
4 实验室检查
4.1 组织触片镜检
取肝、胸水、肾触片，对其进行革兰氏染色，镜检时可以看到有单个、2个相连及少数3～4个短链排列、菌体周围有荚膜、中央有芽孢的革兰氏阳性大的杆菌。
4.2 细菌培养
从病羊的心、肝、脾、肺、肾上取病料，并将其划线接种在4种培养基上，分别为麦康凯、SS琼脂、伊红美蓝、血液培养基和营养琼脂培养基，分别用需厌法及CO2烛缸厌氧法于37℃恒温箱培养。在需氧条件下培养48 h，SS琼脂及麦康凯培养基上的菌落生长较为贫脊，直径约1 mm；营养琼脂培养基、血清培养基、伊红美蓝琼脂培养基上长出的菌落颜色分别为淡灰色、淡灰色、粉红色，菌落状态分别为珍珠状湿润隆起、双重溶血环、线状，直径分别为1～2、2～3、1～3 mm。将其在厌氧环境下培养48 h后，发现这4种培养基上都长出了丰盛的菌落，其中血液培养基上出现直径4～5 mm的双重溶血环，在室温中放置6～7 h后变成淡绿色。取该双重溶血环的典型纯培养物少许，接种10%新鲜羊血清琼脂培养基，厌氧培养18 h后，可见圆盘状、中尖微隆起的淡灰色湿润菌落。
无菌吸取0.1 mL的胸腔积液，接种厌氧肝片肉汤，37 ℃培养12 h，肉汤均匀混浊，呈粉红色，管底形成灰白色沉淀，液面长有白色菌膜。继续培养，肉汤澄明，液面产生多数小气泡，气体pH值5.6，开盖后闻到酸臭味。
4.3 运动力检查
细菌运动力悬滴标本检查，结果为无运动力。
4.4 毒力测定试验
取厌氧肝片肉汤培养物5 mL，经3 000 r/min离心30 min，取澄明肉汤以100 ℃水浴30 min灭活，腹腔接种小鼠2只，1 mL/只，96 h后相继出现重度中毒症状，食欲减少、肌肉震颤，死前口腔流涎，四肢呈划水样。
4.5 生化试验
取纯化好的培养物分别接种于葡聚糖、乳糖、麦芽糖、甘露醇、蔗糖、果糖。结果显示：该菌分解葡萄糖、乳糖、麦芽糖、蔗糖和果糖，产酸产气，不发酵甘露醇。
4.6 动物回归试验
试验组每只小鼠皮下接种厌氧肝片肉汤培养物0.3 mL，对照组每只皮下接种生理盐水0.3 mL。5 h内试验鼠均相继发病死亡。然后将死鼠置恒箱内48 h，取出后剖检可见皮下水肿、气肿，胸腹腔积液，肝包膜下有小气泡，肝、肾组织切面呈疏松海绵状；取肝、胸腔积液涂片，革兰氏染色，镜检可见上述类似的革兰氏阳性、有荚膜、具有双重溶血特性的梭状芽孢杆菌。对照组均健活。
5 诊断
本病例依据流行病学（剪完羊毛后发病）、临床检查（伤口周围急性水肿）、剖检病变和实验室检查结果（分离到梭状芽孢杆菌）可确诊为羊恶性水肿病[4-5]。
6 治疗
此次发病主要是剪羊毛过程中外伤引起的发病，因此治疗过程中须全身治疗与局部处理相结合。一是隔离病羊，每只肌内注射：①头孢噻呋5 mg/kg，或盐酸林克霉素30 mg/kg；②硫酸庆大霉素0.5万U/kg，或硫酸阿米卡星10 mg/kg；③地塞米松2～5 mg；④维生素C 0.5 g，2次/d，连用5～7 d。二是局部处理：切开肿胀之患部，清除腐败坏死组织和渗出液，用0.1%高锰酸钾或3%双氧水充分冲洗，然后在肿胀部边界处分6～10点注射青霉素，每点5万～10万U。1次/d，连续注射2～3次。
7 结语
此次发病与羊的年龄、品种无关，主要是由于剪毛引起的外伤后消毒不严而继发本病。因此，对于该病的预防，要注意防止外伤，手术或接产时要注意无菌操作或术后护理，特别是在剪毛季节，要做好剪伤后的消毒工作。同时，动物死尸应深埋或烧毁，污染物品要彻底消毒。
本病应与气肿疽（俗称黑腿病或鸣疽）相鉴别。气肿疽主要侵害肌肉组织，肌肉丰富的部位发生气性炎性，中心坏死变黑，压之有捻发音，有特征性的海绵状坏死肌肉[6]。
本病的病原是多种梭菌，主要是腐败梭菌、产气荚膜杆菌、偌氏梭菌和溶组织梭菌，均为革兰氏阳性厌氧大杆菌。在兽医临床上，羊的梭菌病（羊快疫、羊猝疽、羊肠毒血症和羔羊痢疾）也是由梭菌引起的，因此在诊断过程，实验室分离出来的梭菌一定要结合流行病学和临床症状进行确诊[7]。
对于本病的治疗，抗菌药物可选用青霉素类、林可胺类、四环素类等，有条件应进行药敏试验，结合药敏试验结果选择针对性的敏感药物，避免耐药性的产生。另外，对于孕羊和羔羊来说，选择林可胺类要慎重[3]。
8 参考文献
[1] 行庆华，王小民，黄炯，等.乡村兽医临床技能培训教材[M].北京：中国农业出版社，2012：193-194.
[2] 陈世军，杨国滨，王力俭，等.新疆常见羊病的诊断与治疗[M].乌鲁木齐：新疆美术摄影出版社，2012：41-43.
[3] 陈世军，黄炯，杨会国，等.抗感染药物兽医临床应用[M].北京：中国农业出版社，2014：158.
[4] 刘祥坤，阳作锋，明邦贵，等.一例兔大肠杆菌病与魏氏梭菌病混合感染的诊疗[J].福建畜牧兽医，2011（4）：63.
[5] 杨扬，艾必燕，樵星芳，等.实验家兔魏氏梭菌病的诊治[J].重庆中草药研究，2010（2）：24-26.
[6] 还庶，蔡玉书，姚龙涛，等.奶山羊恶性水肿病的调查研究（一报）[J].中兽医医药杂志，1997（5）：3-5.
[7] 杨秀环，李秀敏，郑瑞峰，等.绵羊恶性水肿病的诊疗报告[J].当代畜牧，2004（1）：22.