目的：收集胃癌癌旁新鲜组织，分离培养cagA基因阳性幽门螺杆菌(Helicobacter pylori，H.pylori)。使用液体培养基对H.pylori进行摇菌，获取H.pylori培养滤液。使用cagA基因阳性H.pylori培养滤液诱导胃黏膜上皮GES-1细胞恶性转化，使其出现肿瘤化特征。方法：随机选择18例H.pylori阳性胃窦癌患者，取癌旁5 cm处活检组织标本，采用哥伦比亚琼脂培养基分离培养H.pylori。采用PCR方法筛选出cagA基因阳性H.pylori，取其中一阳性菌株，液体振荡摇菌，制备cagA基因阳性H.pylori培养滤液。选择人永生化胃黏膜细胞系GES-1为受试对象，分别以5% (v/v)和10% (v/v) cagA基因阳性H.pylori滤液浓度梯度诱导GES-1细胞恶性转化。通过观察细胞形态、细胞生长情况及克隆集落形成能力，判断转化后GES-1的肿瘤化特征。使用RNA试剂盒提取GES-1及转化后GES-1细胞总RNA。利用基因特异引物反转录结合巢式PCR技术鉴定CD44基因剪接变体。结果：18例H.pylori阳性胃窦癌患者中，9例成功分离培养出H.pylori，分离培养成功率为50%。采用PCR方法检测9株菌的cagA基因，阳性率为100%。选取一株cagA基因阳性菌，液体摇菌，当菌液OD值为1～1.5之间时，提取滤液。结论：从胃癌患者的癌旁组织中成功分离培养出9株cagA基因阳性H.pylori.使用cagA基因阳性的H.pylori培养滤液成功诱导GES-1细胞出现肿瘤化特征。利用基因特异引物反转录结合巢式PCR技术鉴定了CD44基因剪接变体，发现H.pylori诱导GES-1细胞恶性转化过程中发生了CD44基因的差异表达，CD44基因异常剪接事件可能是H.pylori致胃癌发生的重要分子机制，为深入研究胃癌发生的分子机制提供了新的思路。