[目的]Na⁺，K⁺-ATP酶是一类广泛存在于真核生物细胞膜中的跨膜蛋白，是细胞能量转换的重要系统。它利用水解ATP释放的能量跨膜转运Na⁺、K⁺、糖、氨基酸以及其他离子，其中最为重要的是调节细胞内Na⁺、K⁺的平衡，维持细胞的容积、PH值以及内环境的稳定等。Na⁺，K⁺-ATP酶由α亚基、β亚基和γ亚基构成，近年来研究表明，调节亚基β不但能帮助α亚基翻译、合成，以及影响Na⁺，K⁺-ATP酶功能等^{（1．2．3．4．5．6．7．8）}，还与细胞间的粘附、细胞运动性密切相关^{（9．10．11）}。多项研究结果显示肿瘤病人中Na⁺，K⁺-ATP酶和β₁亚基（ATP1B1）的表达明显降低^{（11．12．13．14．15）}，目前ATP1B1与肿瘤的发生、发展、预后、治疗的相关性报道已日渐增多。本课题通过检测诱导分化过程中的人红白血病K562细胞的ATP1B1表达情况和Na⁺，K⁺-ATP酶的相应改变、观察K562细胞在转染ATP1B1重组质粒和RNA干扰片断后的生长状况，探讨了ATP1B1在K562细胞分化过程中的影响，以及在K562细胞生长增殖中的作用，从而为今后进一步研究ATP1B1在肿瘤中的作用提供依据。[方法]1通过二甲亚砜（DMSO）诱导K562细胞分化，NBT还原实验和MTT法验证模型的有效性，采用real-time PCR和超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测技术检测在K562细胞分化过程中ATP1B1基因mRNA和Na⁺，K⁺-ATP酶的变化。2采用基因重组技术，将ATP1B1 cDNA插入到pEGFP-C3载体中，构建ATP1B1真核表达质粒，并将其转染K562细胞，通过RT-PCR和超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测技术检测导入ATP1B1后的ATP1B1基因表达和Na⁺，K⁺-ATP酶活性的改变，观察转染后K562细胞形态学的变化，并以MTT法检测转染细胞的生长增殖情况。3采用化学合成法构建ATP1B1siRNA，转染K562细胞。通过RT-PCR和超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测技术检测干扰ATP1B1后的ATP1B1基因表达和Na⁺，K⁺-ATP酶活性的改变，观察转染后K562细胞形态学的变化，并以MTT法检测转染细胞的生长增殖情况。[结果]1经NBT还原实验和MTT法证实了用1.25％DMSO培养K562细胞的诱导分化模型获成功。Real-time PCR检测显示在K562细胞诱导分化过程中ATP1B1基因表达先持续增高，至第3d后又逐渐下降，均高于未诱导分化组；超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测显示Na⁺，K⁺-ATP酶活性普遍降低，与ATP1B1基因表达升高的趋势相反。各组结果均有统计学意义（P＜0.05）。2采用基因重组技术将ATP1B1全长cDNA片断连入pEGFP-C3载体，并经EcoR I、BamH I酶切后形成4kb和760bp两条片断，与理论计算符合，测序结果确认了方向和碱基的正确性，成功构建了绿色荧光真核表达质粒pEGFP-ATP1B1。脂质体介导将pEGFP-ATP1B1转染到K562细胞中，通过RT-PCR和超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测技术检测出导入ATP1B1后的细胞中ATP1B1基因表达和Na⁺，K⁺-ATP酶活性均增高，转染后细胞固缩、胞膜不完整，MTT法检测显示细胞生长增殖显著抑制（P＜0.01），且随DNA剂量的增加抑制效应更加明显，各组间的差异有统计学意义（P＜0.05）。3由公司设计并构建化学合成法ATP1B1siRNA，经RT-PCR检验干扰ATP1B1基因第950位点的siRNA干扰效果好（＞70％）。脂质体介导将ATP1B1siRNA转染到K562细胞中，通过RT-PCR和超微量Na⁺，K⁺-ATP酶检测技术检测出干扰ATP1B1后细胞中ATP1B1基因表达明显降低（P＜0.05），短期内对Na⁺，K⁺-ATP酶活性及K562细胞生长增殖影响小（P＞0.05），细胞形态变化也不明显。[结论]1通过测定诱导分化过程中的K562细胞ATP1B1 mRNA的表达和Na⁺，K⁺-ATP酶活性，显示了ATP1B1与K562细胞分化程度相关。2成功构建pEGFP-ATP1B1绿色荧光真核表达质粒；向K562细胞中导入外源性ATP1B1能够增加ATP1B1 mRNA的表达以及使Na⁺，K⁺-ATP酶活性增高，能明显的抑制细胞生长增殖。提示ATP1B1在肿瘤细胞生长起到重要作用。3化学合成法构建的ATP1B1siRNA可干扰K562细胞中ATP1B1基因的表达，但短期内对Na⁺，K⁺-ATP酶活性及细胞生长增殖的影响不明显。综上所述，本研究结果显示ATP1B1与肿瘤细胞的生长、分化有密切联系，将可能成为抗肿瘤治疗的新靶点。