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细胞程序性死亡（Programmed Cell Death，PCD）与导管和筛管的分化、繁殖、衰老、超敏反应等过程紧密相关。植物细胞PCD可以被一定的外界条件诱导产生，但是植物体中发生PCD的细胞比率小，相对过程短，不利于植物细胞PCD的检测和机制的深入研究，而体外培养体系具有诱导同步率高、诱导量大的特点。水稻是最重要的粮食作物之一，对其PCD方面的研究有着重要意义。本实验从建立稳定的水稻悬浮细胞系及其再生体系开始，在此基础上用热激处理建立了水稻PCD的诱导体系，并初步确定叶绿体的类囊体膜组分能诱导水稻悬浮细胞PCD。 以水稻（Oryza sativa L．）‘中花11’为外植体，在附加2，4-D的MS培养基上诱导愈伤组织，用AA培养基建立悬浮细胞系。改变AA培养基中氮源、肌醇及2，4-D浓度，结果表明，附加5 mg·L-1 2，4-D、100 mg·L-1肌醇和150％AAN（AAN为标准AA培养基中的氮源浓度）时悬浮细胞系的生物产量最高。悬浮细胞经以MS培养基附加3mg·L-1 2，4-D培养成愈伤组织，再筛选适合愈伤再生的培养基配方，结果表明，MS培养基附加0.2mg·L-1 NAA、1.5mg·L-1 CuSO4·5H2O、2mg·L-16-BA和16g·L-1琼脂最适合经过长期继代的悬浮细胞的再生。 水稻悬浮细胞经50℃热激处理1h，再正常培养，可出现典型的细胞凋亡的变化。2％琼脂糖凝胶电泳检测结果显示，50℃处理1h的样品，其基因组DNA被降解形成明显的DNA Ladder，表明热激诱发了DNA的核小体间的断裂，从而表现出典型的PCD的生化特征，利用DAPI荧光染色也观察到细胞质收缩和染色质凝聚等PCD的形态学变化。类囊体膜组分处理水稻悬浮细胞后再正常培养，也可检测到DNA Ladder、细胞质收缩、染色质凝聚等PCD的典型特征，这表明叶绿体的类囊体膜组分可以诱导水稻悬浮细胞发生PCD。