肿瘤治疗电场对小胶质细胞活性和功能的影响

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目的:通过探究经过肿瘤治疗电场(Tumor Treating Fields,TTFields)处理的人小胶质细胞HMC-3的细胞活性变化以及表达M1型炎性细胞因子(IL-6、IL-1β、TNF-α、i NOS)和M2型抗炎细胞因子(TGF-β)的多少来明确其对小胶质细胞活性和功能的影响,以期能进一步明确、完善TTFields对肿瘤抑制作用的具体机制,为电场治疗在颅内肿瘤的应用提供更精准有效的治疗策略。方法:(1)TTFields基础实验设备构建:(1)计算参数:测量T25细胞培养瓶宽度、两侧壁的厚度以及介电常数,再利用双层介质模型中场强的计算公式E2=U/ε2(d1/ε1+d2/ε2)以及TTFields的场强大小(1-3V/cm)即可确定两侧壁所需电压的大小;(2)将锂电池连接片用双面导电的铜箔胶带紧挨着T25细胞培养瓶的底边贴在其两侧壁制作TTFields基础实验设备所需细胞培养瓶;(3)提前将一正一负两根鳄鱼夹转香蕉插连接线通过过线孔放入恒温培养箱,做好箱内消毒;(4)在实验需要的时候连接整套设备,调整好实验参数,接通电源。(2)细胞实验:(1)人小胶质细胞HMC-3进行细胞培养(37℃,5%CO2);(2)实验分为空白对照组(NC组)、TTFields干预组(TTF组)以及脂多糖诱导组(LPS组),其中NC组、TTF组为正式实验部分,LPS组为小胶质细胞极化方向的验证组,在完全相同的条件下给三组细胞培养瓶接种4×10~5个HMC-3细胞,并加入等量MEM完全培养基(5ml)进行培养;(3)在细胞贴壁时进行细胞换液,再次各加入5ml培养基,然后TTF组进行电场干预,LPS组加脂多糖进行诱导(浓度为0.2mg/ml);(4)贴壁后24小时进行细胞换液,收集NC组、TTF组细胞上清液-80℃保存;(5)贴壁48小时再次收集NC组、TTF组细胞上清液-80℃保存,并对两组细胞进行活细胞计数,然后收集三组细胞沉淀在-80℃保存;(6)进行ELISA、RT-q PCR实验,并对结果进行统计学分析。结果:(1)经TTFields处理48小时的HMC-3人小胶质细胞细胞数量与细胞活力与对照组无明显差异。(2)经TTFields处理的HMC-3人小胶质细胞,促炎细胞因子IL-6、IL-1β、TNF-α、i NOS m RNA的表达水平均升高,以IL-6较为显著,该变化与LPS诱导组趋势相同,但无LPS诱导组升高显著。(3)经TTFields处理的HMC-3人小胶质细胞在第一个24小时和第二个24小时时细胞上清液中分泌的细胞因子只有IL-6较空白对照组升高且具有统计学意义,其余促炎细胞因子IL-1β、TNF-α与M2型抗炎细胞因子TGF-β有升高但无统计学意义。(4)经TTFields处理的HMC-3人小胶质细胞在第一个24小时和第二个24小时时相比,细胞上清液中分泌的促炎、抗炎细胞因子无明显差异。结论:(1)TTFields对HMC-3人小胶质细胞的细胞活性未见明显影响。(2)TTFields促使人小胶质细胞HMC-3所产生的M1型炎性细胞因子如IL-6、IL-1β等增加,表明其可能有与LPS相同的促使小胶质细胞向M1促炎表型激活的作用,从而发挥抗肿瘤作用。
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