TGF-β1基因转染BMSCs复合蚕丝蛋白-壳聚糖支架构建功能软骨的研究

来源 :河北医科大学 | 被引量 : 1次 | 上传用户:rmbsaxn
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目的:骨关节炎(Osteoarthritis)是严重影响人类生活的疾病之一,由于关节软骨内缺乏血液供应,一旦损伤,自我修复能力极差,而且病情会随着时间逐步进展。随着我国乃至全球老年人口的增加,骨关节炎发病率处于上升趋势,同时骨关节疾病开始趋于年轻化,而且人数还在不断增加。目前关节软骨缺损的治疗方法虽然给软骨缺损修复带来了新希望,但是仍存在不足之处,主要包括需要从供区取出骨、软骨组织或在正常组织上钻孔,给供区造成新的损伤,而且需要至少2次以上的手术,同时由于供体来源有限,不能完全满足临床需求,因此,寻求一种替代骨软骨移植物是急需解决的问题。本工作在文献报道和前期研究的基础上,以壳聚糖和蚕丝蛋白为原材料通过冷冻干燥法来制作支架,然后将TGF-β1质粒DNA转染的BMSCs作为种子细胞种植在支架上构建组织工程化培养模型,并自行分泌生长因子,通过自分泌和旁分泌作用,在微环境下诱导BMSCs向软骨细胞分化。研究结果对修复骨软骨缺损有重大的意义,也为治疗骨关节炎提供一定的临床参考。因此,研究工作对于相关骨软骨疾病的治疗与康复进行了有意义的探索。方法:1采用密度梯度离心法分离大鼠BMSCs,并对所获得的细胞进行体外培养及鉴定。研究骨髓间充质干细胞的分离培养方法,了解其一般生物学特性,为进一步研究打下基础。2蚕丝蛋白-壳聚糖组织工程支架的制备:蚕丝蛋白与壳聚糖按不同比例制备三种蚕丝蛋白-壳聚糖支架,对制备的支架进行傅里叶红外光谱结构分析;考察复合支架的密度、孔隙率、热水溶失率、力学性能、吸水膨胀率、抑菌能力等理化性质;支架接种细胞后用MTS法考察细胞在支架上培养1、3、5、7d的增殖情况;SEM扫描电镜观察各组支架的孔径大小、形态及细胞在最优支架上培养2、5d的黏附情况;HE染色观察细胞在最优支架上培养5、10d的形态及渗透生长情况。3基因转染及鉴定:取TGF-β1质粒及其空载体质粒转化感受态细胞涂板,并挑单克隆,用LB培养基扩增,小量提取质粒、测序。通过脂质体法将获得的TGF-β1质粒及其空载体质粒转染第三代BMSCs:具体操作步骤按照脂质体lipofection2000说明书进行。转染48h后行逆转录聚合酶链式反应(reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR)检测TGF-β1mRNA表达水平。4组织工程化培养模型的建立:用0.25%胰酶消化转染TGF-β1质粒、转染空载体质粒48h后的第三代BMSCs及空白对照组的第三代BMSCs,含10%胎牛血清的LG-DMEM培养基终止消化,重悬细胞,计数,以2×106/mL接种到支架上,每块支架接种约20μL细胞悬液,构建组织工程化培养模型。实验共分三组:A组(TGF-β1质粒转染组)、B组(空载体质粒转染组)和C组(空白对照组)。5组织工程化培养模型体外培养3、6、9、12d后分别行酶联免疫吸附实验(enzyme-linked immnosorbent assay,ELISA)法检测培养液上清中TGF-β1蛋白的含量。6组织工程化培养模型体外培养3、6、9、12d后分别利用阿利新蓝法测定培养液上清中酸性糖胺多糖的含量。7组织工程化培养模型体外培养2周后行逆转录聚合酶链式反应(reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR)检测支架细胞复合体中Ⅱ型胶原、Sox9mRNA的表达水平。结果:1采用密度梯度离心法可以成功分离大鼠BMSCs,可见原代细胞刚接种时散在分布,呈圆形,24h后有部分细胞贴壁。贴壁细胞呈长梭形或多角形,第3-7d,细胞融合生长,呈梭形且呈集落样增殖,7-10d可以达到80-90%融合,传代后细胞生长明显加速,生长活跃,并呈典型的漩涡样生长。随着传代次数的增加,可得到高纯度的BMSCs。经3次传代后,细胞形态较为一致。2取生长状态良好的第三代BMSCs,经过成软骨、成骨诱导液诱导后,分别采用天狼猩红染色、甲苯胺蓝染色、ALP染色及茜素红染色来鉴定诱导后软骨细胞、成骨细胞表型。结果证实本实验采用密度梯度离心法提取的BMSCs具有多向分化潜能。3傅里叶红外光谱证明:壳聚糖由糖特征结构β-1,4糖苷键相互连接而成,故各组在1154cm-1及897cm-1处出现了特征性吸收峰,对于CS-SF支架材料来说,随着CS含量的增高,代表无规卷曲/α螺旋结构的吸收峰1654cm-1和1540cm-1不断减小,而对应于1628cm-1和1516cm-1处相当于β-折叠结构的吸收峰不断增大,表明CS的加入改性了SF的结构,使α螺旋结构/无规卷曲向β-折叠结构转变;各组密度分别为0.18±0.03,0.20±0.01,0.18±0.04(g/ml);孔隙率分别为87.36±2.15,77.82±1.37,72.22±1.37(%);热水溶失率分别为:0,0,3.12±1.26(%);弹性模量分别为:8.35±2.64,15.50±1.64,12.55±3.37(KPa);吸水膨胀率分别为:1528.52±194.63,1078.22±100.52,1320.05±179.97(%);抑菌圈直径分别为:18±1,22±2,20.33±1.53(mm);SEM下观察1组支架孔径在50-250μm之间,孔径大小较为一致,孔相通性好,其它两组结构紊乱,孔径大小不一,孔相通性差;生长曲线结果示:1d时1组中活细胞数明显高于2组(P<0.01),3d、5d和7d时,1组中活细胞数量明显高于2组和3组(P<0.01);SEM可见细胞呈梭形黏附于支架上,随着培养天数的增加周围出现较多量细胞外基质;HE染色发现BMSCs在培养初期沿着支架材料内部空隙贴壁生长,随着培养天数的增加,贴壁细胞呈集落样生长,可明显看到细胞间连接;结果证实:CS-SF支架的细胞相容性良好,能促进BMSCs的存活和黏附,可以为细胞提供一个开放的生长环境,促进细胞向支架内部生长,并保证足够的营养和气体交换。4脂质体介导的TGF-β1质粒及其空载体质粒瞬时转染大鼠第三代BMSCs,转染48h后行逆转录聚合酶链式反应(reverse transcriptionpolymerase chain reaction,RT-PCR)检测TGF-β1mRNA的表达水平。RT-PCR结果表明A组TGF-β1mRNA的表达水平高于B组和C组(P<0.01)。5组织工程化培养模型体外培养3、6、9、12d后分别行酶联免疫吸附实验(enzyme-linked immnosorbent assay,ELISA)法检测培养液上清中TGF-β1蛋白的含量,结果显示:四个时点,A组的TGF-β1分泌量都高于B组和C组(P<0.05),同时A组TGF-β1单日分泌量呈逐渐下降趋势,B组和C组TGF-β1单日分泌量则始终呈低表达趋势。6组织工程化培养模型体外培养3、6、9、12d后分别利用阿利新蓝法测定培养液上清中酸性糖胺多糖的含量。结果显示:3、6、12d三个时点,A组培养液上清中GAG含量明显高于B组和C组(P<0.01)。同时A组GAG单日分泌量呈逐渐上升趋势,B组和C组GAG单日分泌量则始终呈低表达趋势。证实A组细胞出现成软骨分化趋势。7组织工程化培养模型体外培养2周后提取总RNA,行逆转录聚合酶链式反应(reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR)检测支架细胞复合体中Ⅱ型胶原、Sox9mRNA的表达水平。结果显示:A组表达Ⅱ型胶原、Sox9mRNA,B组和C组则无Ⅱ型胶原和Sox9两种软骨细胞特异性标志基因的表达。结论:1密度梯度离心法可以成功分离大鼠BMSCs,所分离的BMSCs具有多向分化潜能。2蚕丝蛋白和壳聚糖均为天然生物材料,原料易得,生物相容性好,本研究将蚕丝蛋白与壳聚糖复合,通过强烈的氢键和离子键作用,改善其理化性能,并开发出适合于软骨组织工程领域的蚕丝蛋白-壳聚糖复合支架材料。3脂质体法成功将TGF-β1基因真核表达型质粒及其空载体质粒转染到生长状态良好的第三代BMSCs,然后将转染48h后的第三代BMSCs接种到支架上,构建组织工程化培养模型。A组组织工程化培养模型培养两周后,分别从多个方面证实了组织工程化培养模型的成软骨能力。
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