益生菌是自然存在于人体并参与对人类消化,代谢和健康调节,维持体内环境稳态的重要活性微生物。当前对于益生菌的工业应用依然会受到其制剂及保存技术的限制。本论文以课题组前期筛选的益生菌菌株L.Plantarum CGMCC8198为研究对象,对其冻干粉直投式发酵剂的制备方法进行了优化,并通过基因组、转录组等研究手段,对其在温度胁迫条件下的应答分子机制进行了探索。主要研究结果如下:增殖抗冻培养基的Plackett-Burman结果表明,菊糖、酵母浸粉、L-半胱氨酸为影响试验菌株增殖和抗冻的主要影响因子,通过构建BP神经网络进一步优化得到最佳增殖抗冻培养基为:4%菊糖、11.2%酵母浸粉、0.52%L-半胱氨酸。经验证,活菌数可达（8.10±0.27）×108CFU/mL、冻干存活率可达（75±0.38）%。将豆渣作为固定化菌株的载体,豆渣吸附的最大活菌数为1.07x109cfu/g。冻干保护剂的Plackett-Burman试验结果表明,木糖醇1%,壳寡糖6%,浓缩乳清蛋白粉20%为菌株的最佳保护剂,通过细胞流式术评价了保护剂对菌株冻干后的存活力起到了显著作用。由冻干菌粉的储存加速试验（30℃、42℃、60℃储存）预测出菌粉在常温（25℃）和冰箱冷藏（4℃）的保质期为265天和14.3天。利用RNA-seq技术分别对低温胁迫（4℃）、对照组（37℃）和高温胁迫（52℃）三种条件下植物乳杆菌CGMCC8198的转录组进行了测序。温度胁迫引起细胞产生了大量冷热应激蛋白,低温处理组有165个显著上调的基因,19个下调的基因,而高温处理组有47个显著上调的基因和127个显著下调的基因。与原始菌株相比,温度刺激后的菌株具有更高地糖酵解效率、肽聚糖以及精氨酸代谢活性,有利于减少温度胁迫对细胞造成的损伤。其中,高温主要聚集在DNA损伤修复通路上而低温多聚到一些细胞形态通路上。进而,本研究还构建了冷激蛋白CspB和热激蛋白GroES的乳酸菌表达质粒、冷激蛋白CspA的转录调控及5’ UTR区域的GFP报告质粒以及冷休克蛋白靶向敲除的CRISPR-Cas9基因编辑系统,为进一步验证相关功能基因对乳酸菌抗温度胁迫的影响机制奠定了基础。