无脊椎动物和低等脊椎动物的雌性个体卵巢内均存在生殖干细胞来维持雌性配子的持续发生，然而雌性哺乳动物的卵巢内是否也存在配子的再生一直备受争议。传统观点认为雌性哺乳动物出生后卵巢内所有的生殖细胞都已经发育到了原始卵泡阶段，形成了足够其终生可用的卵泡固定池，没有生殖干细胞及其分化而来的卵可以补给卵泡池。近年来，相继有科学家从小鼠及人的卵巢中分选出了一类可长期体外培养的生殖细胞，该类细胞在体外培养时表现出干细胞特征，移植到正常或者经化疗药物处理导致不育的小鼠卵巢中能形成有功能的卵。然而，这些研究都是通过细胞体外培养或者移植实验来证明生殖干细胞的存在，有的科学家认为所谓的生殖干细胞是在分选及培养过程中产生的人工的生殖干细胞，并且对目前广泛使用的卵巢生殖干细胞分选基因Ddx4提出质疑，认为Ddx4并不能真正有效的富集到生殖干细胞。体内世系追踪与细胞体外培养和移植相比，最大的优点是能反映细胞在体内正常生理状态下的真实行为。已有科学家采用Ddx4作为示踪基因或者以Ddx4是否表达作为生殖干细胞的标准在小鼠卵巢内并未检测到生殖干细胞及卵子的再生。因此雌性哺乳动物卵巢中是否存在卵子的再生现象，如果存在，再生现象是否依赖于生殖干细胞，生殖干细胞特异性表达的分子标记是什么仍然是亟待解决的科学问题。相关成果会给临床上治疗卵巢功能失败、建立性细胞转基因动物等提供理论依据。在本论文中，通过体内世系追踪系统对成年小鼠卵巢中是否存在卵子再生及生殖干细胞进行了深入探讨，并对收集的不同发育阶段的生殖单细胞样品基因表达初步分析以用于后续卵巢生殖干细胞特异性表达分子标记的筛选。　　体内示踪系统能否成功检测到干细胞的关键是示踪基因的选择。和前人不同的是，选取Oct4作为示踪基因研究小鼠卵巢中是否存在生殖干细胞。Oct4表达于可自我更新的胚胎时期原始生殖细胞及成年小鼠卵巢中较为原始的生殖细胞。在建立的Oct4-MerCreMer+/Tm;R26R-EYFPTm/Tm转基因示踪系统中，被标记上EYFP的细胞都是生殖细胞，重点研究尚未形成明显滤泡结构的小生殖细胞在示踪过程中的变化。在示踪1天，3天，2个月及4个月后，通过免疫荧光染色在成年小鼠的卵巢中发现了以下4个重要现象。1，示踪不同时间后，卵巢内都存在表达Sycp3及Stra8的小生殖细胞。Sycp3和Stra8是减数第一次分裂前期瞬时表达的基因。经过长达4个月的示踪仍存在表达Sycp3及Stra8的小生殖细胞，提示成年小鼠卵巢中存在减数分裂的重新进入现象。2，示踪不同时间后，卵巢中都存在表达Sycp3及Stra8的原始卵泡，提示卵巢中存在原始滤泡的补充现象。3，示踪不同时间，小鼠卵巢中有极少部分的生殖细胞能进行不同形式的有丝分裂和增殖。4，经过长达4个月的示踪，卵巢中始终存在EYFP+Oct4+Dazl-的小生殖细胞。通过Brdu标记实验，Oct4+Dazl-的小生殖细胞在进行有丝分裂的DNA复制，而Oct4+Dazl+的小生殖细胞在进行减数分裂的DNA复制。因此，通过Oct4驱动的体内世系追踪系统，在成年小鼠的卵巢中发现了减数分裂的持续进入和原始卵泡的补充，证明了成年小鼠卵巢中存在卵子再生现象。同时有少数生殖细胞能通过有丝分裂的DNA复制及不同形式的增殖在长期示踪过程中维持自身群体的稳定存在，提示成年小鼠卵子的再生基于卵巢生殖干细胞，并且潜在的生殖干细胞存在于Oct4+Dazl-生殖细胞群中，而不存在于Oct4+Dazl+或者Oct4+Ddx4+细胞群中。　　在确认小鼠卵巢生殖干细胞的存在之后，试图对该类细胞特异表达的分子标记进行筛选。采用单细胞扩增技术结合已建立的示踪系统收集不同发育阶段的生殖单细胞样品，希望通过RNA-seq及对不同发育阶段的生殖细胞进行基因表达分析，找到卵巢生殖干细胞群体以及特异性在卵巢生殖干细胞中表达，在其他分化阶段不表达的基因。通过fluidigm检测对目前收集的单细胞样品进行初步基因表达分析，发现有的单细胞样品表达Sycp3、Mlh1、Msh5等减数第一次分裂前期瞬时表达的基因，有的单细胞样品在表达Sycp3等基因的同时还表达原始卵泡标记基因Sohlh1及Sohlh2，再次从RNA水平上证明成年小鼠卵巢存在减数分裂的重新进入与原始滤泡的补充。通过PCA分析可以将样品分为X、Y、Z三大类，其中X类又可以分为m、n、o三群，猜测Z类及o群单细胞样品可能含有潜在的卵巢生殖干细胞。同时发现卵巢生殖细胞的基因表达具有较大的异质性，提示要想确切的了解生殖细胞的发育过程并准确的通过测序的基因表达数据从众多的样品中辨别出卵巢生殖干细胞还需要再扩大样品数量。后续将采用Smart-seq2结合细胞标签的扩增技术继续收集样品，以用于高通量样品的测序及分析。采用生殖干细胞特异表达的分子标记建立新的示踪系统可以阐明生殖干细胞对成年小鼠卵巢正常功能维持的意义，并为该类细胞的体外研究提供基础。