环糊精葡萄糖基转移酶（cyclodextrin glycosyltransferase，CGTase）及β-环糊精（β-cyclodextrin，β-CD）具有较大的应用价值。工业用CGTase均由微生物发酵产生，而β-CD是应用CGTase转化淀粉进行生产。我国CGTase及β-CD的生产虽有20多年的历史，由于生产菌种发酵产酶水平较低，CGTase及β-CD的生产成本过高导致市场价格偏高而使其应用受到一定的限制。 目前国内厂家生产菌种发酵30～40h，产酶水平为2000～4000 IU／mL。CGTase的生产成本约占β-CD整个生产成本的一半。应用离子束注入诱变技术对CGTase产生菌进行诱变，选育高产菌株，并研究高产菌株发酵产酶的最适发酵条件，以降低CGTase和β-CD的生产成本。 经过能量30keV、剂量范围1×10¹⁴～1×10¹⁶ions／cm²的氮离子注入诱变选育，得到产酶水平是出发菌株1.62倍的高产菌株B．sp．HA-1，该菌株经中科院微生物保藏中心鉴定为一新菌株。 经过发酵条件的优化，得到两个适宜的培养基配方和最佳培养条件。配方Ⅰ为糊精2％、玉米浆5％、k₂HPO₄0.2％、（NH₄）₂SO₄ 0.02％；配方Ⅱ为玉米粉2％、玉米浆5％、k₂HPO₄ 0.2％、MgSO₄ 0.02％。在培养基起始pH8～9，温度28℃的培养条件下发酵酶活力最高，增加接种量可以缩短发酵周期。应用配方Ⅰ，以10％接种量接种，在最佳培养条件下，高产菌株B．sp．HA-1摇瓶发酵24h产酶水平在6000IU／mL左右，40h产酶在7000IU／mL以上，最高达到8000IU／mL。 研究了高产菌株B．sp．HA-1产酶的传代稳定性。连续传20代，F2～F20代产酶水平是F1代的98.11％～102.66％，表明该菌株产酶具有良好的传代稳定性。 比较高产菌株和出发菌株产生的CGTase，发现两者之间的分子量或比活力均没有差异，认为诱变后菌株产酶水平的提高可能与CGTase基因的转录与表达增强有关。 对产自B．sp．HA-1菌株的CGTase进行纯化和酶学性质研究，结果表明该酶的分子量为71.9KDa；在60℃活力最高，55℃以下稳定性好，65℃的半衰期约为1h；在pH5～6时活力最高，pH5～11范围内较为稳定；金属离子Zn²⁺、Ag⁺、Hg²⁺、Cu²⁺、Fe²⁺、Al³⁺对CGTase的活性具有抑制作用。