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摘要[目的]比较猴头菌子实体、菌丝体粗提物理化性质，以及2组粗多糖对胃粘膜上皮细胞氧化模型保护能力的差异。[方法]采用水提醇沉法提取粗多糖，用苯酚-浓硫酸法测定葡萄糖含量、间羟基联苯法测糖醛酸含量、BCA法测量蛋白质含量。每组分别加入一定浓度的含粗多糖的培养基，分别培养12、24、48 h后加入含过氧化氢培养基。用MTT法测细胞活度。[结果]猴头菌菌丝体、子实体粗多糖中葡萄糖含量分别为49.5%、44.5%，糖醛酸含量分别为22.01%、29.23%，蛋白质含量分别为27.69%、23.54%。菌丝体组12、24、48 h抑制率分别为75.1%、68.1%、16.9%；子实体组分别为70.2%、61.8%、16.7%。[结论]猴头菌菌丝体与子实体粗多糖中糖醛酸、葡萄糖、蛋白质含量相近。子实体粗多糖比菌丝体粗多糖抗氧化活性短时间内略强，长时间无差异。
关键词 猴头菌菌丝体；猴头菌子实体；理化性质；胃粘膜细胞；抗氧化
中图分类号 S567.3 文献标识码 A 文章编号 0517-6611（2016）24-123-02
Abstract[Objective] To compare the physicochemical properties of crude polysaccharides compare of Hercium erinaceus mycelium and fruit body， and to compare the differences of the effects of two crude extracts on oxidation protection ability of gastric mucosa epithelial cell. [Method] Crude crude polysaccharides were extracted by waterextraction and alcoholprecipitation method. Glucose content was detected by phenolsulphuric acid method； uronic acid content was detected by mhydroxydiphenyl method； and protein content was detected by BCA method. Culture medium containing certain content of polysaccharides compare was added into each group. After cultivated for 12， 24 and 48 h， culture medium containing hydrogen peroxide was added. Viability of cells was detected by MTT. [Result] Glucose contents in mycelium and fruit body were 49.5% and 44.5%， respectively. The uronic acid contents were 22.01% and 29.23%； protein contents were 27.69% and 23.54%.The inhibitory rates of mycelium group at 12， 24 and 48 h were 75.1%， 68.1% and 16.9%， respectively； those of fruit body were 70.2%， 61.8% and 16.7%， respectively. [Conclusion] In the crude crude polysaccharides of mycelium and fruit body of Hercium erinaceus， contents of uronic acid， glucose and protein are close. Crude polysaccharides of fruit body have stronger antioxidant activity than extracts of mycelium in short term， but there were no differences in long term.
Key words Hericium Erinaceus mycelium； Hercium erinaceus fruit body； Physicochemical properties； Gastric mucosal cell； Antioxidant
猴头菌（Hericium Erinaceus Pers.）属担子菌纲多孔菌目齿菌科猴头属，是一种珍贵的药食两用真菌，其性平、味甘，助消化、利五脏，自古以来被誉为“山珍”。猴头菌富含多种营养成分，据近现代研究发现，其活性成分主要有多糖、脂肪酸、甾醇、酚类等，现代医学证明其具有保肝护胃[1]、增强人体免疫力[2]、降血糖[3]、抗癌[4]、抗氧化[5]等功效。我国现有以猴头菌为原料治疗萎缩性胃炎及胃穿孔的药品，但制备工艺简单、有效成分不清楚、作用机理不明确。另外，猴头菌菌丝体与子实体均能入药，但两者成分的差异及其抗胃粘膜氧化活性差异目前尚无相关研究。为此，笔者采用水提醇沉法提取大分子化合物，用苯酚-浓硫酸法、间羟基联苯法、BCA法测定猴头菌子实体及菌丝体中粗多糖理化性质，用过氧化氢制造胃粘膜氧化应激模型，并用MTT法比较两者抗氧化能力，研究猴头菌子实体与菌丝体粗多糖理化性质及抗胃粘膜氧化活性差异。
1 材料与方法
1.1 材料 1.1.1 原材料。猴头菌子实体，购于北京同仁堂长春药店；猴头菌菌丝体，产自山西康欣药业有限公司，国药准字 H14023098；GES-1细胞来源于中科院上海细胞库。
1.1.2 主要试剂。DMEM-高糖、胎牛血清购于美国Gibco；标准品葡萄糖、葡萄糖醛酸购于美国Sigma；苯酚、硫酸，分析纯，北京化工厂；BCA试剂盒、MTT，上海碧云天生物试剂有限公司；H2O2，美国Fisher。
1.1.3主要仪器。UV-752紫外分光光度计，上海第三分析仪器厂；MK-3酶标仪，美国Thermo；实验室专用超纯水机，Millipore公司；二氧化碳培养箱，日本三洋电器。
1.2 方法
1.2.1 猴头菌粗多糖提取。
1.2.1.1子实体粗多糖提取。猴头菌干燥子实体切制，加5倍体积蒸馏水，煮沸持续3 h后滤出残渣，残渣再加入2倍体积水持续煮沸3 h，合并煎煮液后浓缩至粘稠，冷却后加95%乙醇至药液浓度为80%沉降8～12 h。取出沉淀冷冻干燥。
1.2.1.2菌丝体粗多糖提取。猴头菌菌丝体粉末，加入3倍体积水于70 ℃水浴中温浸12 h，离心，将沉淀中加入1倍水于70 ℃水浴中温浸8 h合并温浸液，浓缩至粘稠，加95%乙醇使药液浓度到80%沉降8～12 h。取出沉淀冷冻干燥。
1.2.2 总糖含量测定。
1.2.2.1 标准曲线绘制。将葡萄糖标准品置于含五氧化二磷的保干器中干燥至恒重，精密称取10 mg，置于100 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，振荡摇匀配制成100 μg/mL的葡萄糖对照品溶液。吸取葡萄糖对照品溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL，分别置于试管中，向各试管中加蒸馏水补足到1.0 mL，再分别向其中加入5%苯酚水溶液1.0 mL，涡流振荡，再加入浓硫酸5 mL，振荡均匀后冷却至室温，于490 nm处测定吸光度值[6]。以葡萄糖质量为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.2.2样品含量测定。精密称取“1.2.1”中干燥后粉碎的2种样品各3份，每份约20.00 mg，置于100 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，依次吸取1 mL于6支试管中，重复“1.2.2.1”操作测吸光度值，根据回归曲线计算总糖的含量。
1.2.3 糖醛酸含量测定。
1.2.3.1 标准曲线绘制。将葡萄糖醛酸标准品置于含五氧化二磷的保干器中干燥至恒重，精密称取25 mg，置于50 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，振荡摇匀后取出10 mL定容至100 mL，配制成50 μg/mL的葡萄糖醛酸对照品溶液。精密吸取葡萄糖对照品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4 mL，分别置于试管中，向各试管中加蒸馏水补足至0.4 mL，于冰水浴中加入2.4mL 0.0125 mol/L的四硼酸钠-硫酸溶液，再置于沸水浴中加热5 min，取出迅速冷却至室温，加入0.15%间羟基联苯（0.5%NaOH溶液配制）40 μL，立即混匀，于525 nm处测定吸光度值[7]。以葡萄糖醛酸质量为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.3.2样品含量测定。精密称取“1.2.1”中2种样品各约25 mg，置于25 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，各取6支试管，每支精密吸取400 μL。“1.2.3.1”方法测吸光度值，并根据标准曲线计算出实际含糖醛酸的含量。
1.2.4 蛋白质含量测定。
1.2.4.1 标准曲线绘制。取BCA试剂盒中标准品10 μL，加90 μL PBS使标准品终浓度为0.5 μg/μL，在96孔板中分别加0、1、2、8、12、16、20 μL，再在各孔中加入PBS补足至20 μL，工作液A∶B按1∶50比例配置好混匀，每孔加入200 μL，于60 ℃反应30 min，在595 nm处测吸光度值[7]。以标准品质量（μg）为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.4.2 样品含量测定。
将“1.2.1”中2种样品精密称量各约50 mL，加蒸馏水定容至25 mL，配制成2.0 mg/mL溶液。以“1.2.4.1”方法测吸光度值，带入标准曲线计算出蛋白质含量。
1.2.5 抗氧化活性试验。
1.2.5.1 样品配制。将“1.2.1”中2种样品各用DMEM-高糖培养基配制成1 mg/mL的供试样品，在无菌环境中用0.22 μm滤器过滤待用。
1.2.5.2细胞准备。收集对数生长期GES-1细胞，使细胞浓度为2×104个/mL吹吸均匀，将细胞加入96孔板，每孔100 μL。将细胞分为空白组、对照组、菌丝体组、子实体组。用无血清培养基培养24 h后扣去培养基，空白组、对照组加入无血清培养基，给药组分别加入“1.2.5.1”供试样品100 μL。分别培养12、24、48 h后加入含100 nmol/mL过氧化氢的DMEM-高糖培养基[8]100 μL培养4 h后扣除培养基，每孔加入含10% MTT试剂100 μL的培养基，30 min后扣除MTT，加入150 μL DMSO在490 nm处测吸光度值，以空白组为对照，计算各处理组细胞抑制率，公式如下：
抑制率=OD空白组-OD处理组OD空白组×100%
2 结果与分析
2.1 总糖含量测定以葡萄糖质量为横坐标、吸光度为纵坐标得到线性回归方程为：y=10.350x-0.002 3（R2=0.999 7），根据样品吸光度计算菌丝体粗多糖中总糖占样品质量的49.5%，子实体中总糖含量为44.5%。
2.2 糖醛酸含量测定以糖醛酸质量为横坐标、吸光度为纵坐标得到线性回归方程为：y=28.960x-0.009 8（R2=0998 4），根据样品吸光度计算得知菌丝体粗多糖中糖醛酸含量为22.01%，子实体提取物中含29.23%糖醛酸。 2.3 蛋白质含量测定根据蛋白质质量及相应的吸光度值制作标准曲线，其线性回归方程为：y=0.035 8x+0.133 0（R2=0.999 3），测得样品中蛋白质含量分别为菌丝体中含27.69%、子实体中含23.54%。
2.4 抗氧化活性比较从图1可看出，12 h时各组抑制率分别为过氧化氢组36.8%、菌丝体组75.1%、子实体组70.2%；24 h时各组抑制率分别为过氧化氢组50.2%、菌丝体组68.1%、子实体组61.8%；48 h时各组抑制率分别为过氧化氢组78.6%、菌丝体组16.9%、子实体组16.7%。
3 结论与讨论
该试验结果显示，猴头菌的菌丝体与子实体粗多糖中成分均以葡萄糖为主，说明其抗氧化活性成分主要为多糖，这与黄萍等[1]研究的结论一致。现代医学研究表明，众多疾病均与过氧化损伤有一定相关性，其中包括心血管疾病、神经系统疾病及消化系统疾病等[4]。猴头菌子实体与菌丝体多糖对胃粘膜上皮细胞（GES-1细胞）氧化模型的保护程度长时间内活性相同。猴头菌子实体生长周期长，对环境要求严格，生产成本较高，如果仅考虑药用价值，猴头菌菌丝体更加经济合理。菌丝体以发酵条件温和、生长条件较为宽泛，且泛，且生产周期短、单次收获量较大等优势已被广泛关注。国内外很多药用菌类均已陆续发掘菌丝体的利用价值，猴头菌菌丝体的开发前景广阔，值得引起重视。
参考文献
[1] 黄萍，罗珍，郭重仪，等.猴头菇多糖胃粘膜保护作用研究[J].中药材，2011，34（10）：1588-1591.
[2] 初云海，刘雨.猴头菌多糖对小鼠中性粒细胞吞噬和杀菌功能的影响[J].现代中西医结合杂志，2010，19（13）：1575-1577.
[3] 杜志强，任大明，葛超，等.猴头菌丝多糖降血糖作用研究[J].生物技术，2006，16（6）：40-42.
[4] LEE J S，HONC E K.Hericium erinaceus enhances doxorubicin-induced apoptosis in human hepatocellular carcinoma cells[J].Cancer letters，2010，297（2）：14-17.
[5] XU H，WU P R，SHEN Z Y，et al.Chemical analysis of Hericium erinaceam polysaccharides and effect of the polysaccharides on derma antioxidant enzymes，MMP1 and TIMP1 activities[J].Biological macromolecules，2010，47：33-36.
[6] LIU X H，CHEN Y G，LIN L，et al.Comparison of methods in determination of polysaccharide in Lycium barbarum L.[J].Food science and technology，2009，34（9）：270-273.
[7] WANG M X，GAO Y，XU D D，et al.Physicochemical properties and antigastric ulcer activity of Hericium erinaceus polysaccharide[J].Food science and technology，2015，40（6）：224-227.
[8] 崔丽金，徐兴国.石决明提取液对晶状体抗氧化能力的影响[J].医学研究杂志，2014，43（3）：22-24.
关键词 猴头菌菌丝体；猴头菌子实体；理化性质；胃粘膜细胞；抗氧化
中图分类号 S567.3 文献标识码 A 文章编号 0517-6611（2016）24-123-02
Abstract[Objective] To compare the physicochemical properties of crude polysaccharides compare of Hercium erinaceus mycelium and fruit body， and to compare the differences of the effects of two crude extracts on oxidation protection ability of gastric mucosa epithelial cell. [Method] Crude crude polysaccharides were extracted by waterextraction and alcoholprecipitation method. Glucose content was detected by phenolsulphuric acid method； uronic acid content was detected by mhydroxydiphenyl method； and protein content was detected by BCA method. Culture medium containing certain content of polysaccharides compare was added into each group. After cultivated for 12， 24 and 48 h， culture medium containing hydrogen peroxide was added. Viability of cells was detected by MTT. [Result] Glucose contents in mycelium and fruit body were 49.5% and 44.5%， respectively. The uronic acid contents were 22.01% and 29.23%； protein contents were 27.69% and 23.54%.The inhibitory rates of mycelium group at 12， 24 and 48 h were 75.1%， 68.1% and 16.9%， respectively； those of fruit body were 70.2%， 61.8% and 16.7%， respectively. [Conclusion] In the crude crude polysaccharides of mycelium and fruit body of Hercium erinaceus， contents of uronic acid， glucose and protein are close. Crude polysaccharides of fruit body have stronger antioxidant activity than extracts of mycelium in short term， but there were no differences in long term.
Key words Hericium Erinaceus mycelium； Hercium erinaceus fruit body； Physicochemical properties； Gastric mucosal cell； Antioxidant
猴头菌（Hericium Erinaceus Pers.）属担子菌纲多孔菌目齿菌科猴头属，是一种珍贵的药食两用真菌，其性平、味甘，助消化、利五脏，自古以来被誉为“山珍”。猴头菌富含多种营养成分，据近现代研究发现，其活性成分主要有多糖、脂肪酸、甾醇、酚类等，现代医学证明其具有保肝护胃[1]、增强人体免疫力[2]、降血糖[3]、抗癌[4]、抗氧化[5]等功效。我国现有以猴头菌为原料治疗萎缩性胃炎及胃穿孔的药品，但制备工艺简单、有效成分不清楚、作用机理不明确。另外，猴头菌菌丝体与子实体均能入药，但两者成分的差异及其抗胃粘膜氧化活性差异目前尚无相关研究。为此，笔者采用水提醇沉法提取大分子化合物，用苯酚-浓硫酸法、间羟基联苯法、BCA法测定猴头菌子实体及菌丝体中粗多糖理化性质，用过氧化氢制造胃粘膜氧化应激模型，并用MTT法比较两者抗氧化能力，研究猴头菌子实体与菌丝体粗多糖理化性质及抗胃粘膜氧化活性差异。
1 材料与方法
1.1 材料 1.1.1 原材料。猴头菌子实体，购于北京同仁堂长春药店；猴头菌菌丝体，产自山西康欣药业有限公司，国药准字 H14023098；GES-1细胞来源于中科院上海细胞库。
1.1.2 主要试剂。DMEM-高糖、胎牛血清购于美国Gibco；标准品葡萄糖、葡萄糖醛酸购于美国Sigma；苯酚、硫酸，分析纯，北京化工厂；BCA试剂盒、MTT，上海碧云天生物试剂有限公司；H2O2，美国Fisher。
1.1.3主要仪器。UV-752紫外分光光度计，上海第三分析仪器厂；MK-3酶标仪，美国Thermo；实验室专用超纯水机，Millipore公司；二氧化碳培养箱，日本三洋电器。
1.2 方法
1.2.1 猴头菌粗多糖提取。
1.2.1.1子实体粗多糖提取。猴头菌干燥子实体切制，加5倍体积蒸馏水，煮沸持续3 h后滤出残渣，残渣再加入2倍体积水持续煮沸3 h，合并煎煮液后浓缩至粘稠，冷却后加95%乙醇至药液浓度为80%沉降8～12 h。取出沉淀冷冻干燥。
1.2.1.2菌丝体粗多糖提取。猴头菌菌丝体粉末，加入3倍体积水于70 ℃水浴中温浸12 h，离心，将沉淀中加入1倍水于70 ℃水浴中温浸8 h合并温浸液，浓缩至粘稠，加95%乙醇使药液浓度到80%沉降8～12 h。取出沉淀冷冻干燥。
1.2.2 总糖含量测定。
1.2.2.1 标准曲线绘制。将葡萄糖标准品置于含五氧化二磷的保干器中干燥至恒重，精密称取10 mg，置于100 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，振荡摇匀配制成100 μg/mL的葡萄糖对照品溶液。吸取葡萄糖对照品溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL，分别置于试管中，向各试管中加蒸馏水补足到1.0 mL，再分别向其中加入5%苯酚水溶液1.0 mL，涡流振荡，再加入浓硫酸5 mL，振荡均匀后冷却至室温，于490 nm处测定吸光度值[6]。以葡萄糖质量为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.2.2样品含量测定。精密称取“1.2.1”中干燥后粉碎的2种样品各3份，每份约20.00 mg，置于100 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，依次吸取1 mL于6支试管中，重复“1.2.2.1”操作测吸光度值，根据回归曲线计算总糖的含量。
1.2.3 糖醛酸含量测定。
1.2.3.1 标准曲线绘制。将葡萄糖醛酸标准品置于含五氧化二磷的保干器中干燥至恒重，精密称取25 mg，置于50 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，振荡摇匀后取出10 mL定容至100 mL，配制成50 μg/mL的葡萄糖醛酸对照品溶液。精密吸取葡萄糖对照品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4 mL，分别置于试管中，向各试管中加蒸馏水补足至0.4 mL，于冰水浴中加入2.4mL 0.0125 mol/L的四硼酸钠-硫酸溶液，再置于沸水浴中加热5 min，取出迅速冷却至室温，加入0.15%间羟基联苯（0.5%NaOH溶液配制）40 μL，立即混匀，于525 nm处测定吸光度值[7]。以葡萄糖醛酸质量为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.3.2样品含量测定。精密称取“1.2.1”中2种样品各约25 mg，置于25 mL容量瓶中，加蒸馏水定容，各取6支试管，每支精密吸取400 μL。“1.2.3.1”方法测吸光度值，并根据标准曲线计算出实际含糖醛酸的含量。
1.2.4 蛋白质含量测定。
1.2.4.1 标准曲线绘制。取BCA试剂盒中标准品10 μL，加90 μL PBS使标准品终浓度为0.5 μg/μL，在96孔板中分别加0、1、2、8、12、16、20 μL，再在各孔中加入PBS补足至20 μL，工作液A∶B按1∶50比例配置好混匀，每孔加入200 μL，于60 ℃反应30 min，在595 nm处测吸光度值[7]。以标准品质量（μg）为横坐标、吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，计算线性回归方程。
1.2.4.2 样品含量测定。
将“1.2.1”中2种样品精密称量各约50 mL，加蒸馏水定容至25 mL，配制成2.0 mg/mL溶液。以“1.2.4.1”方法测吸光度值，带入标准曲线计算出蛋白质含量。
1.2.5 抗氧化活性试验。
1.2.5.1 样品配制。将“1.2.1”中2种样品各用DMEM-高糖培养基配制成1 mg/mL的供试样品，在无菌环境中用0.22 μm滤器过滤待用。
1.2.5.2细胞准备。收集对数生长期GES-1细胞，使细胞浓度为2×104个/mL吹吸均匀，将细胞加入96孔板，每孔100 μL。将细胞分为空白组、对照组、菌丝体组、子实体组。用无血清培养基培养24 h后扣去培养基，空白组、对照组加入无血清培养基，给药组分别加入“1.2.5.1”供试样品100 μL。分别培养12、24、48 h后加入含100 nmol/mL过氧化氢的DMEM-高糖培养基[8]100 μL培养4 h后扣除培养基，每孔加入含10% MTT试剂100 μL的培养基，30 min后扣除MTT，加入150 μL DMSO在490 nm处测吸光度值，以空白组为对照，计算各处理组细胞抑制率，公式如下：
抑制率=OD空白组-OD处理组OD空白组×100%
2 结果与分析
2.1 总糖含量测定以葡萄糖质量为横坐标、吸光度为纵坐标得到线性回归方程为：y=10.350x-0.002 3（R2=0.999 7），根据样品吸光度计算菌丝体粗多糖中总糖占样品质量的49.5%，子实体中总糖含量为44.5%。
2.2 糖醛酸含量测定以糖醛酸质量为横坐标、吸光度为纵坐标得到线性回归方程为：y=28.960x-0.009 8（R2=0998 4），根据样品吸光度计算得知菌丝体粗多糖中糖醛酸含量为22.01%，子实体提取物中含29.23%糖醛酸。 2.3 蛋白质含量测定根据蛋白质质量及相应的吸光度值制作标准曲线，其线性回归方程为：y=0.035 8x+0.133 0（R2=0.999 3），测得样品中蛋白质含量分别为菌丝体中含27.69%、子实体中含23.54%。
2.4 抗氧化活性比较从图1可看出，12 h时各组抑制率分别为过氧化氢组36.8%、菌丝体组75.1%、子实体组70.2%；24 h时各组抑制率分别为过氧化氢组50.2%、菌丝体组68.1%、子实体组61.8%；48 h时各组抑制率分别为过氧化氢组78.6%、菌丝体组16.9%、子实体组16.7%。
3 结论与讨论
该试验结果显示，猴头菌的菌丝体与子实体粗多糖中成分均以葡萄糖为主，说明其抗氧化活性成分主要为多糖，这与黄萍等[1]研究的结论一致。现代医学研究表明，众多疾病均与过氧化损伤有一定相关性，其中包括心血管疾病、神经系统疾病及消化系统疾病等[4]。猴头菌子实体与菌丝体多糖对胃粘膜上皮细胞（GES-1细胞）氧化模型的保护程度长时间内活性相同。猴头菌子实体生长周期长，对环境要求严格，生产成本较高，如果仅考虑药用价值，猴头菌菌丝体更加经济合理。菌丝体以发酵条件温和、生长条件较为宽泛，且泛，且生产周期短、单次收获量较大等优势已被广泛关注。国内外很多药用菌类均已陆续发掘菌丝体的利用价值，猴头菌菌丝体的开发前景广阔，值得引起重视。
参考文献
[1] 黄萍，罗珍，郭重仪，等.猴头菇多糖胃粘膜保护作用研究[J].中药材，2011，34（10）：1588-1591.
[2] 初云海，刘雨.猴头菌多糖对小鼠中性粒细胞吞噬和杀菌功能的影响[J].现代中西医结合杂志，2010，19（13）：1575-1577.
[3] 杜志强，任大明，葛超，等.猴头菌丝多糖降血糖作用研究[J].生物技术，2006，16（6）：40-42.
[4] LEE J S，HONC E K.Hericium erinaceus enhances doxorubicin-induced apoptosis in human hepatocellular carcinoma cells[J].Cancer letters，2010，297（2）：14-17.
[5] XU H，WU P R，SHEN Z Y，et al.Chemical analysis of Hericium erinaceam polysaccharides and effect of the polysaccharides on derma antioxidant enzymes，MMP1 and TIMP1 activities[J].Biological macromolecules，2010，47：33-36.
[6] LIU X H，CHEN Y G，LIN L，et al.Comparison of methods in determination of polysaccharide in Lycium barbarum L.[J].Food science and technology，2009，34（9）：270-273.
[7] WANG M X，GAO Y，XU D D，et al.Physicochemical properties and antigastric ulcer activity of Hericium erinaceus polysaccharide[J].Food science and technology，2015，40（6）：224-227.
[8] 崔丽金，徐兴国.石决明提取液对晶状体抗氧化能力的影响[J].医学研究杂志，2014，43（3）：22-24.