OsAGO1b和OsAGO18在水稻花药发育中的功能研究

来源 :华南农业大学 | 被引量 : 0次 | 上传用户:allenhuqiqi
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作为最重要的粮食作物之一,水稻植株的正常生长发育是保证其产量的关键所在;作为最主要的单子叶植物研究的模式植物,水稻花粉的正常发育是保障水稻较高产量的基本前提。迄今为止,Os AGO1b和Os AGO18已被报道可以通过结合mi RNA或si RNA来参与调控水稻生长发育、胁迫应答和抗病毒防御等过程。但它们在水稻花粉发育过程中的功能研究还不深入。实验室前期研究中发现,通过RNA干涉技术下调表达Os AGO18和Os AGO1b的水稻转基因植株均表现花药卷曲和植株结实率显著下降。花药半薄切片观察显示,Os AGO18干涉植株同一花药的四个药室出现1-2个药室发育异常,但Os AGO1b干涉植株的花药卷曲是否也是由部分药室发育异常导致还不清楚。q RT-PCR结果显示Os AGO18-RNAi植株小穗中Os AGO1b表达下调,所以我们推测在水稻花药发育过程中,Os AGO18和Os AGO1b之间可能存在一定的调控关系。为了近一步探讨二者在水稻花药发育过程中的遗传关系和分子机制,本研究利用分子生物学、细胞学和遗传学等方法对Os AGO18和Os AGO1b在水稻花药发育中的功能进行了分析。主要结果如下:1、通过q RT-PCR和GUS组织化学染色发现,Os AGO1b和Os AGO18在不同发育时期的小穗中均有表达,尤其是在较小发育时期表达量较高。2、对Os AGO1b-RNAi、Os AGO1b-CRISPR/Cas9和Os AGO18-CRISPR/Cas9植株的表型观察发现,这些株系的花药均变短且卷曲,同时卷曲花药的内侧皱缩,花粉I2-KI可染率明显降低,结实率下降明显,特别是某些Os AGO18-CRISPR/Cas9株系花药颜色泛白,结实率非常低,几乎不育。3、花药半薄切片观察发现,Os AGO1b表达量下调破坏了花药形态的正常建成,大部分花药4个药室中的1-2个甚至3个药室发育为高度液泡化且紧密排列的细胞团;其他个别花药发育异常的情况包括:药室发育迟缓;药壁发育正常,但无花粉母细胞或小孢子;不能正常形成4个药室等。4、通过TUNEL方法检测了野生型和Os AGO1b下调表达植株花药发育过程中的PCD信号,结果显示,Os AGO1b下调表达导致花药正常发育药室的绒毡层PCD提前,而呈现细胞团状态的药室在不同发育时期均有较强的PCD信号。5、对水稻AGO1家族另外三个成员Os AGO1a、Os AGO1c和Os AGO1d的RNAi和过表达植株的表型观察发现,这3个成员的花药发育和野生型相比无明显差异,表明Os AGO1b在水稻花药发育中发挥关键调控作用。6、为了验证Os AGO18-RNAi植株的花药卷曲表型是否和Os AGO1b表达下调有关,我们进行了遗传杂交验证,将Os AGO1b过表达植株和Os AGO18-RNAi植株进行杂交得到F1植株,F1自交得到的F2群体出现性状分离,共计4种表型,即功能恢复表型(ZH11表型的阳性植株)、阳性父本表型、阳性母本表型和ZH11阴性表型。这一结果表明Os AGO18-RNAi植株的花药卷曲和Os AGO1b表达下调直接相关。7、为了探究Os AGO1b-RNAi植株花药卷曲是否和已知的侧生器官极性发育途径有关,本研究通过q RT-PCR方法对Os AGO1b-RNAi植株S1-S3和S4-S5时期小穗中OSHB和ARF转录因子家族部分基因的表达进行了检测,结果表明,部分基因的表达和野生型差异显著。同时,对mi R156、mi R166和mi RNA168成熟体的积累量进行了检测,发现这些mi RNA的积累在Os AGO1b-RNAi植株中均有变化。以上结果暗示Os AGO1b与Os AGO18参与了水稻花药形态建成的调节可能和这些已经途径存在联系。8、Os AGO18所在基因组DNA的互补链存在一个转录区域和Os AGO18部分反向重叠的转录本。为了探究Os AGO18-RNAi植株表型是否由于其反向转录本过表达所致,我们构建了其过表达载体转化水稻获得了转基因植株。表型观察显示Os AGO18-RNAi植株的花药表型可能与其反向转录本的过表达没有直接关系。9、为了确定Os AGO1b和Os AGO18调控花药发育的分子机制,本研究对野生型、Os AGO1b-RNAi与Os AGO18-RNAi植株S1-S3和S4-S6时期的小穗进行了转录组测序分析。差异表达基因筛选结果显示,与野生型相比,Os AGO1b与Os AGO18表达下调均导致S1-S3时期小穗中4个相同基因的表达上调,我们将这四个基因命名为花药形态建成调控因子(anther patterning regulator,APR),即Os APR1-Os APR4。这4个基因将作为Os AGO1b和Os AGO18调控的下游靶基因用于后续研究验证。
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