基于编码微球的悬浮阵列技术(SAT)适用于在小体积的单个样品内高通量同时检测多种分析物。该技术已经被广泛应用于免疫学研究和基因检测等领域,并且在临床诊断领域作为通用分析平台显现出巨大潜力。编码微球作为悬浮阵列技术的核心材料,通常需要对微米级的聚合物、二氧化硅或磁性颗粒进行光谱或光学编码,并赋予其生物分子反应位点。而编码微球种类、数量、性能与价格影响着该技术的发展进程。因此,研究与开发更多制备简便、成本低廉和性能良好的荧光编码微球具有重要的现实意义。从实际应用角度出发,本论文提出一种基于疏水共轭聚合物和染料组合的荧光编码微球阵列的制备方法,并通过流式细胞仪研究了该阵列的解码,以及探究了基于该编码微球的生物分子检测。具体的研究内容如下:选用共轭聚合物聚(亚苯基亚乙炔基)(PPE)和有机染料尼罗红(NR)作为两种荧光团,以直径为5 μm的表面氨基修饰的聚甲基丙烯酸缩水甘油酯微球(APGMA)作为基质微球,通过将微球浸入不同荧光团的浸渍溶液中,通过吸附作用将荧光团依次加载到基质球上,得到二元荧光微球APGMA-PPE-NR。经过制备条件优化,实现了通过简单地改变浸渍溶液中荧光团母液的体积来控制所得微球的荧光性能,并制备了八组双发射波长、不同发射强度的二元荧光编码微球。从激光共聚焦扫描显微镜照片发现这些微球在微观上呈现出两种色彩组合和多种亮度,并且PPE倾向于集中在微球表面、NR均匀分布在微球内,这种分布能有效避免两种荧光物质之间的光物理通讯(如荧光共振能量转移等),因此能够避免解码的复杂化。宏观状态下,在自然光和紫外光下观察到微球悬浮液的颜色与荧光发射光谱所得的信息一致。这些微球在抗洗涤、热和光照方面都表现出良好的稳定性。基于以上制备条件的优化结果并根据波长一强度组合的编码策略,通过改变浸渍溶液中两种荧光团的浓度,制备出包含64组编码的二元荧光微球阵列。通过流式细胞仪验证了这些微球的两组荧光信号均能够被单独解码,并且实现了一些混合编码微球样品中不同样品的分辨识别,表明这种差异化的编码很可能在实际应用中被识别。最后,采用对山羊IgG抗原检测的夹心免疫测定模型,所用编码微球无需进行额外的表面官能化修饰,实现了在微球上夹心免疫结构的固定,证明了所得的编码微球用于悬浮阵列的可行性。