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摘 要：犬肠梗阻是兽医临床上常见的一种以持续性呕吐、腹痛及明显的全身症状为特征的犬急腹症。该病常引起犬的水、电解质平衡失调，酸碱平衡紊乱，严重时可导致患犬休克。本课题将立足于国内外犬肠梗阻病最新研究成果，结合临床诊疗病例，对犬肠梗阻病的临床诊断和治疗方法进行研究，以得到关于犬肠梗阻病更为高效、精确的诊疗方法与治疗方案。
关键词：犬;肠梗阻;诊断;手术治疗
1 材料与方法
1.1 材料
动物：4月龄哈士奇，公犬。该犬未免疫、驱虫。
仪器：MIKASAHF100HA数字高频X线机（日本MIKASA公司）、SH138-iSTAT動物专用血液分析仪（美国）、BC-2600Vet兽用全自动血液细胞分析仪（深圳迈瑞）等。
药品：麻佛微素针剂（法国威隆）、痛立定针剂（法国威隆）、维福D4（德国维氏代谢强）、科特壮（德国原装进口拜耳系列）等。
1.2 诊断方法
1.2.1整体检查
整体状态的检查：观察患犬的精神状态，对外界刺激的反应能力;观察患犬姿势与体态;检查患犬运动步态是否异常。
1.2.2 消化系统检查
食欲及采食状况检查：包括食欲、饮欲及采食状况的检查。食欲及饮欲的检查可以通过主人叙述或患犬对食物和水的要求欲望及采食量判断;采食状况的检查需要观察患犬是否存在采食障碍、咀嚼障碍、吞咽障碍等。
呕吐检查：观察患犬呕吐次数、频率及呕吐物形态。
腹部检查：通过视诊、触诊、叩诊、听诊等方法，对患犬腹部外部轮廓、腹壁张力、胃肠蠕动音等进行检查。
1.2.3 实验室检查
患犬采血进行血常规检查。助手将患犬保定后，操作员将患犬前肢伸直，对采血部位剃毛、消毒，然后用左手的拇指和食指压紧采血部位上端使其充血，右手将注射器缓慢刺入静脉，放松左手，以适当速度抽血5ml。采集血液使用SH138-iSTAT动物专用血液分析仪进行检查。血常规主要检查指标包括白细胞计数（WBC）、淋巴细胞总数（LYM）、单核细胞总数（MON）、红细胞计数（RBC）、血红蛋白测定（HGB）、红细胞压积（HCT）、平均红细胞体积（MCV）、平均红细胞血红蛋白（MCH）、平均红细胞血红蛋白浓度（MCHC）、红细胞体积分布宽度（RDW）、血小板计数（PLT）、平均血小板体积（MPV）以及血小板体积分布宽度（PDWc）等。
1.2.4 影像学检查
经一般检查和实验室检查怀疑该犬可能为肠梗阻，因此对患犬进一步X线检查，需要对患犬腹部进行侧位与腹背位拍片。
侧位片：患犬右侧卧或左侧卧，垫高胸骨使之与腰椎等高，将患犬后肢向后牵拉和脊柱约成120°角，将X线束中心对准腹中部，即最后肋骨后缘。侧位照射范围包括前界含膈，后界抵髋关节，上界含脊柱，下界达腹底壁。
腹背位：动物仰卧，前肢向前拉，后肢自然摆放或屈曲呈“蛙腿”状。以第5～6肋间隙为投照中心，从肩前到第一腰椎为胸部腹背位投射;以脐部为投照中心，从剑状软骨到耻骨的区域为腹部腹背位投射。
由于X线检查无法直接作出诊断，故利用硫酸钡造影技术辅助诊断，同时也有助于确定犬肠梗阻的位置。患犬禁食18小时后，饲喂高密度造影剂（硫酸钡），再次进行X线照射，同上拍摄患犬侧位及腹背位X光片。
1.3治疗方法
1.3.1保守治疗
患犬口服20ml舒通（石蜡油），配合腹外按压，促进排便。经过保守治疗后病情并未好转，因此采用进一步手术治疗。
1.3.2手术治疗
犬异物性肠梗阻手术具体实施步骤如下：
术前用药：给患犬称重。术前1小时，静脉注射麻佛微素针剂2mg/kg体重及0.9%氯化钠100ml;术前15分钟，皮下注射止血敏注射液0.25mg，阿托品注射液0.02mg/kg体重以及痛立定注射液0.1ml/kg体重。
麻醉保定：肌肉注射丙泊酚5mg/kg体重进行诱导麻醉，然后插入气管插管，连接呼吸麻醉机异氟烷维持麻醉;待患犬进入麻醉状态，仰卧保定，四肢用绳子固定于手术台，充分暴露手术部位;心电监护仪密切监测患犬心率、血压、血氧饱和度等生理参数。
术部准备：用毛剪将患犬腹底壁剑状软骨到耻骨前缘范围内的体毛剃去，清洁干净后用2%碘酊消毒，再用75%酒精棉球脱碘，覆盖无菌创巾。
手术进行：在患犬腹底壁中部腹中线作6cm左右切口，钝性分离皮下组织和肌肉，剪开腹膜，以食指和中指伸入腹腔找到阻塞肠管并将其缓慢牵出创外，用生理盐水浸湿的纱布隔离肠管与创缘。接着将肠管梗阻部位两侧的肠内容物挤向远离阻塞物的方向，同时由助手用夹持住距阻塞部位两侧1～2cm处健康肠管。检查肠管活力。手术刀在肠壁上做4cm纵向切口，取出异物，用酒精棉球清理切口边缘及肠腔内异物。采用可吸收缝线全层结节缝合肠管。缝合完毕后，用灭菌注射器向缝合处的肠腔注射灭菌生理盐水，检查缝合部位是否漏液，漏液需及时追缝。最后用灭菌生理盐水冲洗肠管，将肠管还纳腹腔，常规关闭腹腔。
1.3.2术后护理
患犬术后护理输液方案如下所示，术后第1至4天采用输液方案一，术后第5天开始采用输液方案二。
方案一：
0.9%氯化钠100ml+麻佛微素针剂2mg/kg体重：静脉注射。
甲硝锉注射液15mg/kg体重：静脉注射。
5%葡萄糖100ml+ATP 10mg+辅酶A 25U：静脉注射。
VC注射液0.2g+50%葡萄糖10ml：静脉注射。
0.9%氯化钠100ml+维福D4（代谢强）1ml/kg体重：静脉注射。
痛立定注射液0.1ml/kg体重：皮下注射。 止血敏（酚磺乙胺注射液）0.25mg/次：皮下注射。
方案二：
0.9%氯化钠100ml+麻佛微素针剂2mg/kg体重：静脉注射。
甲硝锉注射液15mg/kg体重：静脉注射。
5%葡萄糖100ml+脂肪乳10ml：静脉注射。
VC注射液0.2g+50%葡萄糖10ml：静脉注射。
0.9%氯化钠100ml+科特壮0.1ml/kg体重：静脉注射。
痛立定注射液0.1ml/kg体重：皮下注射。
止血敏（酚磺乙胺注射液）0.25mg/次：皮下注射。
2. 結果
2.1 诊断结果
2.1.1 整体检查结果
患犬精神沉郁，耳耷头低，不愿活动;被毛和皮肤检查，未见脱毛症状，皮肤温度与湿度无异常;可视黏膜检查颜色正常;体表淋巴结检查，触诊其大小、形状、硬度等无明显变化。测定直肠温度38.7℃，心跳158次/min，呼吸数测定28次/min。由整体检查结果分析，患犬身体机能并无大碍。
2.1.2 消化系统检查结果
主述患犬食欲不振，数小时未进食，稍喝水，不存在采食或吞咽等障碍;呕吐4～5次，呕吐物水样;腹部触诊敏感，隐约摸到肠管内坚实异物团块。临床上腹部触诊敏感、有硬块及呕吐症状是犬肠梗阻病的重要诊断依据，故可初步判定患犬可能是肠梗阻。
2.1.3 实验室检查结果
由血常规检查结果可知患犬淋巴细胞总数（LYM）及淋巴细胞百分比（LY%）偏高，单核细胞总数（MON）及单核细胞百分比（MO%）偏低，血红蛋白测定（HGB）结果偏低，其它指标无明显异常。临床上，淋巴细胞总数偏高常指示机体病毒感染及胞内感染;单核细胞总数（MON）偏高往往与真菌感染、布病或结核病有关，而偏低一般不具有诊断意义;血红蛋白测定结果较高可能是红细胞增多症，较低可能是低血色素性贫血或缺铁性贫血，临床诊断还需要参考患犬红细胞的减少程度综合分析。
2.1.4 影像学检查结果
X线检查：X影像结果是X射线穿过动物体的不同部位因衰减差别形成的，颜色深浅与X线弱化作用有关，主要影响因素为厚度、组织密度等。一般可穿过呈现黑色，减少穿过呈现灰色，不能穿过呈现白色。患犬右侧卧位X光片未见异常，而由左侧卧位与腹背位X光片可见肠管内密度较低物体，怀疑肠管肠管梗阻而积液、积气。
胃肠造影：通过X线检查已能大致确定患犬的梗阻位置，再进行胃肠造影确定梗阻位置有利于进行手术。造影剂在到胃的行进过程较为顺利，当进入小肠段后遇到了阻碍，通过腹背位X光片能大致判定梗阻发生在患犬回肠部位。
2.2 治疗结果
患犬进入麻醉状态后，无挣扎，肌肉松弛。手术过程中各项生命体征正常，打开腹腔后，取出梗阻肠段，观察肠段颜色粉红，尚能蠕动，判定肠管仍有活力，遂进行肠管切开术。在患犬的回肠部取出梗阻物玉米芯，并为患犬清理了梗阻部位前后的积液与食物残渣，术部消毒。整个手术过程进展非常顺利，手术结束后约30分钟患犬恢复意识。
患犬术后禁食48小时，用输液维持营养，术后第3天开始喂食流质食品和营养膏;持续7天的全身抗感染治疗，患犬未见不适与伤口感染等问题，伤口的愈合速度较快，也无渗血现象;术后第7天术部拆线。
3 讨论
3.1分类和病因
研究病例患犬因误食了玉米芯而导致异物性肠梗阻。临床上，导致犬肠梗阻病的病因较多，根据发病原因的不同也将犬肠梗阻分为机械性肠梗阻和动力性肠梗阻两大类，临床诊断时需要对各类肠梗阻有所区分以选择最佳的治疗方案。
3.2 诊断
近年来，犬肠梗阻的发病率在全国各大中小城市日益趋增，虽然该病的诊断技术与治疗手段已有较大提升，但是临床上也常因对该病的认识不足，将其与犬胃肠炎等常见病相混淆，错误采用抗菌、补液支持等治疗方法，以致患犬病情延误，错过了治疗的最佳时机。为能更好的杜绝误诊，需要在临床表现（腹痛、腹胀、呕吐和排便停止，而动力性肠梗阻后期患犬的脉搏、体温、白血球计数等）及实验室检查结果方面将本病与其他同类疾病相区别，并且及时采取X线检查/B超检查等诊断技术以进行确诊。
3.3治疗
犬肠梗阻病的治疗临床上根据患犬病因、病情的不同，主要采取保守治疗和手术治疗两个方案，一般对于精神状态较好、病情轻且阻塞物表面光滑的患犬，可以尝试保守治疗;当保守治疗无效或患犬病情较重，阻塞物表面不规则且较尖锐时，则需尽早实施手术治疗[14]。此外，对于功能性肠梗阻及一些特殊临诊症状患犬，还需要根据其具体病症进行对症治疗。
参考文献
[1] 白涛，李长安. X线诊断6例宠物犬的肠梗阻[J]. 中国兽医杂志，2014，50（2）：64-65.
[2] 徐郁森. 犬常见临床症状鉴别和护理[J]. 养犬，2010，1：8+33.
[3] 唐芳索. 犬呕吐性疾病的鉴别诊断与治疗[J]. 中国工作犬业，2009，5：12-15.
[4] 张红超，陈龙如. 宠物常见病病例分析[M]. 北京：金盾出版社，2009：107.
关键词：犬;肠梗阻;诊断;手术治疗
1 材料与方法
1.1 材料
动物：4月龄哈士奇，公犬。该犬未免疫、驱虫。
仪器：MIKASAHF100HA数字高频X线机（日本MIKASA公司）、SH138-iSTAT動物专用血液分析仪（美国）、BC-2600Vet兽用全自动血液细胞分析仪（深圳迈瑞）等。
药品：麻佛微素针剂（法国威隆）、痛立定针剂（法国威隆）、维福D4（德国维氏代谢强）、科特壮（德国原装进口拜耳系列）等。
1.2 诊断方法
1.2.1整体检查
整体状态的检查：观察患犬的精神状态，对外界刺激的反应能力;观察患犬姿势与体态;检查患犬运动步态是否异常。
1.2.2 消化系统检查
食欲及采食状况检查：包括食欲、饮欲及采食状况的检查。食欲及饮欲的检查可以通过主人叙述或患犬对食物和水的要求欲望及采食量判断;采食状况的检查需要观察患犬是否存在采食障碍、咀嚼障碍、吞咽障碍等。
呕吐检查：观察患犬呕吐次数、频率及呕吐物形态。
腹部检查：通过视诊、触诊、叩诊、听诊等方法，对患犬腹部外部轮廓、腹壁张力、胃肠蠕动音等进行检查。
1.2.3 实验室检查
患犬采血进行血常规检查。助手将患犬保定后，操作员将患犬前肢伸直，对采血部位剃毛、消毒，然后用左手的拇指和食指压紧采血部位上端使其充血，右手将注射器缓慢刺入静脉，放松左手，以适当速度抽血5ml。采集血液使用SH138-iSTAT动物专用血液分析仪进行检查。血常规主要检查指标包括白细胞计数（WBC）、淋巴细胞总数（LYM）、单核细胞总数（MON）、红细胞计数（RBC）、血红蛋白测定（HGB）、红细胞压积（HCT）、平均红细胞体积（MCV）、平均红细胞血红蛋白（MCH）、平均红细胞血红蛋白浓度（MCHC）、红细胞体积分布宽度（RDW）、血小板计数（PLT）、平均血小板体积（MPV）以及血小板体积分布宽度（PDWc）等。
1.2.4 影像学检查
经一般检查和实验室检查怀疑该犬可能为肠梗阻，因此对患犬进一步X线检查，需要对患犬腹部进行侧位与腹背位拍片。
侧位片：患犬右侧卧或左侧卧，垫高胸骨使之与腰椎等高，将患犬后肢向后牵拉和脊柱约成120°角，将X线束中心对准腹中部，即最后肋骨后缘。侧位照射范围包括前界含膈，后界抵髋关节，上界含脊柱，下界达腹底壁。
腹背位：动物仰卧，前肢向前拉，后肢自然摆放或屈曲呈“蛙腿”状。以第5～6肋间隙为投照中心，从肩前到第一腰椎为胸部腹背位投射;以脐部为投照中心，从剑状软骨到耻骨的区域为腹部腹背位投射。
由于X线检查无法直接作出诊断，故利用硫酸钡造影技术辅助诊断，同时也有助于确定犬肠梗阻的位置。患犬禁食18小时后，饲喂高密度造影剂（硫酸钡），再次进行X线照射，同上拍摄患犬侧位及腹背位X光片。
1.3治疗方法
1.3.1保守治疗
患犬口服20ml舒通（石蜡油），配合腹外按压，促进排便。经过保守治疗后病情并未好转，因此采用进一步手术治疗。
1.3.2手术治疗
犬异物性肠梗阻手术具体实施步骤如下：
术前用药：给患犬称重。术前1小时，静脉注射麻佛微素针剂2mg/kg体重及0.9%氯化钠100ml;术前15分钟，皮下注射止血敏注射液0.25mg，阿托品注射液0.02mg/kg体重以及痛立定注射液0.1ml/kg体重。
麻醉保定：肌肉注射丙泊酚5mg/kg体重进行诱导麻醉，然后插入气管插管，连接呼吸麻醉机异氟烷维持麻醉;待患犬进入麻醉状态，仰卧保定，四肢用绳子固定于手术台，充分暴露手术部位;心电监护仪密切监测患犬心率、血压、血氧饱和度等生理参数。
术部准备：用毛剪将患犬腹底壁剑状软骨到耻骨前缘范围内的体毛剃去，清洁干净后用2%碘酊消毒，再用75%酒精棉球脱碘，覆盖无菌创巾。
手术进行：在患犬腹底壁中部腹中线作6cm左右切口，钝性分离皮下组织和肌肉，剪开腹膜，以食指和中指伸入腹腔找到阻塞肠管并将其缓慢牵出创外，用生理盐水浸湿的纱布隔离肠管与创缘。接着将肠管梗阻部位两侧的肠内容物挤向远离阻塞物的方向，同时由助手用夹持住距阻塞部位两侧1～2cm处健康肠管。检查肠管活力。手术刀在肠壁上做4cm纵向切口，取出异物，用酒精棉球清理切口边缘及肠腔内异物。采用可吸收缝线全层结节缝合肠管。缝合完毕后，用灭菌注射器向缝合处的肠腔注射灭菌生理盐水，检查缝合部位是否漏液，漏液需及时追缝。最后用灭菌生理盐水冲洗肠管，将肠管还纳腹腔，常规关闭腹腔。
1.3.2术后护理
患犬术后护理输液方案如下所示，术后第1至4天采用输液方案一，术后第5天开始采用输液方案二。
方案一：
0.9%氯化钠100ml+麻佛微素针剂2mg/kg体重：静脉注射。
甲硝锉注射液15mg/kg体重：静脉注射。
5%葡萄糖100ml+ATP 10mg+辅酶A 25U：静脉注射。
VC注射液0.2g+50%葡萄糖10ml：静脉注射。
0.9%氯化钠100ml+维福D4（代谢强）1ml/kg体重：静脉注射。
痛立定注射液0.1ml/kg体重：皮下注射。 止血敏（酚磺乙胺注射液）0.25mg/次：皮下注射。
方案二：
0.9%氯化钠100ml+麻佛微素针剂2mg/kg体重：静脉注射。
甲硝锉注射液15mg/kg体重：静脉注射。
5%葡萄糖100ml+脂肪乳10ml：静脉注射。
VC注射液0.2g+50%葡萄糖10ml：静脉注射。
0.9%氯化钠100ml+科特壮0.1ml/kg体重：静脉注射。
痛立定注射液0.1ml/kg体重：皮下注射。
止血敏（酚磺乙胺注射液）0.25mg/次：皮下注射。
2. 結果
2.1 诊断结果
2.1.1 整体检查结果
患犬精神沉郁，耳耷头低，不愿活动;被毛和皮肤检查，未见脱毛症状，皮肤温度与湿度无异常;可视黏膜检查颜色正常;体表淋巴结检查，触诊其大小、形状、硬度等无明显变化。测定直肠温度38.7℃，心跳158次/min，呼吸数测定28次/min。由整体检查结果分析，患犬身体机能并无大碍。
2.1.2 消化系统检查结果
主述患犬食欲不振，数小时未进食，稍喝水，不存在采食或吞咽等障碍;呕吐4～5次，呕吐物水样;腹部触诊敏感，隐约摸到肠管内坚实异物团块。临床上腹部触诊敏感、有硬块及呕吐症状是犬肠梗阻病的重要诊断依据，故可初步判定患犬可能是肠梗阻。
2.1.3 实验室检查结果
由血常规检查结果可知患犬淋巴细胞总数（LYM）及淋巴细胞百分比（LY%）偏高，单核细胞总数（MON）及单核细胞百分比（MO%）偏低，血红蛋白测定（HGB）结果偏低，其它指标无明显异常。临床上，淋巴细胞总数偏高常指示机体病毒感染及胞内感染;单核细胞总数（MON）偏高往往与真菌感染、布病或结核病有关，而偏低一般不具有诊断意义;血红蛋白测定结果较高可能是红细胞增多症，较低可能是低血色素性贫血或缺铁性贫血，临床诊断还需要参考患犬红细胞的减少程度综合分析。
2.1.4 影像学检查结果
X线检查：X影像结果是X射线穿过动物体的不同部位因衰减差别形成的，颜色深浅与X线弱化作用有关，主要影响因素为厚度、组织密度等。一般可穿过呈现黑色，减少穿过呈现灰色，不能穿过呈现白色。患犬右侧卧位X光片未见异常，而由左侧卧位与腹背位X光片可见肠管内密度较低物体，怀疑肠管肠管梗阻而积液、积气。
胃肠造影：通过X线检查已能大致确定患犬的梗阻位置，再进行胃肠造影确定梗阻位置有利于进行手术。造影剂在到胃的行进过程较为顺利，当进入小肠段后遇到了阻碍，通过腹背位X光片能大致判定梗阻发生在患犬回肠部位。
2.2 治疗结果
患犬进入麻醉状态后，无挣扎，肌肉松弛。手术过程中各项生命体征正常，打开腹腔后，取出梗阻肠段，观察肠段颜色粉红，尚能蠕动，判定肠管仍有活力，遂进行肠管切开术。在患犬的回肠部取出梗阻物玉米芯，并为患犬清理了梗阻部位前后的积液与食物残渣，术部消毒。整个手术过程进展非常顺利，手术结束后约30分钟患犬恢复意识。
患犬术后禁食48小时，用输液维持营养，术后第3天开始喂食流质食品和营养膏;持续7天的全身抗感染治疗，患犬未见不适与伤口感染等问题，伤口的愈合速度较快，也无渗血现象;术后第7天术部拆线。
3 讨论
3.1分类和病因
研究病例患犬因误食了玉米芯而导致异物性肠梗阻。临床上，导致犬肠梗阻病的病因较多，根据发病原因的不同也将犬肠梗阻分为机械性肠梗阻和动力性肠梗阻两大类，临床诊断时需要对各类肠梗阻有所区分以选择最佳的治疗方案。
3.2 诊断
近年来，犬肠梗阻的发病率在全国各大中小城市日益趋增，虽然该病的诊断技术与治疗手段已有较大提升，但是临床上也常因对该病的认识不足，将其与犬胃肠炎等常见病相混淆，错误采用抗菌、补液支持等治疗方法，以致患犬病情延误，错过了治疗的最佳时机。为能更好的杜绝误诊，需要在临床表现（腹痛、腹胀、呕吐和排便停止，而动力性肠梗阻后期患犬的脉搏、体温、白血球计数等）及实验室检查结果方面将本病与其他同类疾病相区别，并且及时采取X线检查/B超检查等诊断技术以进行确诊。
3.3治疗
犬肠梗阻病的治疗临床上根据患犬病因、病情的不同，主要采取保守治疗和手术治疗两个方案，一般对于精神状态较好、病情轻且阻塞物表面光滑的患犬，可以尝试保守治疗;当保守治疗无效或患犬病情较重，阻塞物表面不规则且较尖锐时，则需尽早实施手术治疗[14]。此外，对于功能性肠梗阻及一些特殊临诊症状患犬，还需要根据其具体病症进行对症治疗。
参考文献
[1] 白涛，李长安. X线诊断6例宠物犬的肠梗阻[J]. 中国兽医杂志，2014，50（2）：64-65.
[2] 徐郁森. 犬常见临床症状鉴别和护理[J]. 养犬，2010，1：8+33.
[3] 唐芳索. 犬呕吐性疾病的鉴别诊断与治疗[J]. 中国工作犬业，2009，5：12-15.
[4] 张红超，陈龙如. 宠物常见病病例分析[M]. 北京：金盾出版社，2009：107.