目的：1．建立一种简便有效的体外分离、纯化、培养、扩增SD大鼠骨髓间充质干细胞(bonemarrowmesenchymalstemcells，BMSCs)的方法，并研究其生物学特性，为涎腺组织工程提供理想的种子细胞。2．探索一种有效的体外培养颌下腺细胞(submandubularglandcells，SMGCs)的方法，观察细胞形态，研究其生物学特性，为体外诱导BMSCs转分化为涎腺细胞提供实验基础。3．用SMGCs裂解液诱导骨髓间充质干细胞，并评价转分化后的BMSCs的生物学功能。　　 方法：1．全骨髓贴壁培养法分离纯化SD大鼠BMSCs，在体外培养和连续传代，倒置显微镜下连续观察细胞的形态变化；测定原代和传代BMSCs的生长曲线，研究其生物学特征。2．酶消化法分离并培养新生SD大鼠的SMGCs，研究其生物学特性，测定各代腺泡细胞分泌α-淀粉酶的量。3．取SMGCs分泌α-淀粉酶显著一代制成细胞裂解液，诱导BMSCs转分化，细胞免疫组织化学法鉴定诱导后的BMSCs分泌α-淀粉酶的功能。　　 结果：1．用全骨髓贴壁培养法分离、纯化SD大鼠的BMSCs，并进行体外培养和扩增，在倒置显微镜下观察培养的BMSCs形态变化，发现培养的细胞符合典型的BMSCs形态学表现，即细胞呈梭形，旋窝状排列。绘制BMSCs的生长曲线，发现BMSCs原代生长潜伏期较长，一般为4天左右，9-10天进入对数生长期，14天左右细胞生长缓慢，进入平台期。而传代细胞，生长潜伏期较原代缩短，一般为2天左右，5天左右进入快速生长期，9天左右生长速度变缓，且随着传代次数的增加，细胞数目有所减少，从生长曲线图来看，P2到P5代细胞生长处于顶峰期，P6代细胞均数开始减少。经统计学分析，结果表明，P2至P6代细胞数相差无统计学意义P＞0.05，P2与P1，P10代细胞数相差有显著差异P＜0.05。　　 2．本实验用酶消化法分离、培养SD大鼠下颌下腺细胞，在培养液加入如表皮生长因子、转铁蛋白等促细胞生长因子后，所培养的下颌下腺细胞生长、增殖能力较强，倒置显微镜下观察下颌下腺细胞的形态，发现2天后即开始形成克隆，呈卵圆形，10天后细胞增殖，形成单一的细胞层。传代后，细胞继续培养形成“鹅卵石”样结构。经细胞免疫组织化学鉴定，荧光显微镜下显示出胞质为绿色，核为蓝色的下颌下腺腺泡细胞。　　 3．BMSCs在下颌下腺腺泡细胞裂解液的诱导作用下，实验组与对照组相比形态发生了明显变化，实验组的BMSCs由最初的长梭形逐渐向多角形的腺泡样细胞转变。细胞免疫组化学染色结果显示，诱导一周后实验组BMSCsα-淀粉酶阳性，而对照组BMSCsα-淀粉酶阴性。　　 结论：1、采用全骨髓贴壁筛选法分离获取的大鼠BMSC细胞多，成活率较高，增殖速度较快。可以作为培养大鼠BMSCs的常规方法。本研究结果将为进一步深入研究BMSCs的诱导分化和应用奠定基础。　　 2、建立规范的颌下腺细胞培养体系，对颌下腺组织工程化的研究及诸多有关颌下腺的离体试验，有着非常重要的价值。　　 3、本研究通过裂解液诱导法，体外模拟腺泡细胞微环境，观察下颌下腺细胞微环境对BMSCs向下颌下腺细胞转分化所起的作用，以获取涎腺组织工程中的种子细胞。