免疫学分析（Immunoassay）因特异性强、灵敏度高、稳定性好等优势,在食品安全、生物医学和环境监控等领域备受关注。然而,传统免疫学检测方法的灵敏度偏低,无法满足微量目标物的检测需求。因此,建立快速准确的超灵敏检测方法对于食品安全快速检测领域意义重大。本研究拟从提高检测信号的角度出发,开展了两种基于金纳米粒子的信号放大技术用于提高免疫学检测灵敏度的研究。在基于金纳米花（Gold nanoflowers,Au NFs）装载镧系元素溶解增强镧系元素荧光免疫测定法（Dissociation-enhanced lanthanide fluoroimmunoassay,DELFIA）超灵敏检测Cronobacter muytjensii（C.muytjensii）的方法学研究中,以Au NFs作为载体装载大量的Eu3+,以此来增强传统的DELFIA的信号强度,进而提高检测灵敏度。首先设计了两个末端为巯基的双亲性配体（thiol-EDTA和thiol-NHNH2）,并将其修饰在Au NFs的表面,随后Au NFs表面修饰的EDTA鳌合大量的Eu3+,并通过酰肼基团标记C.muytjensii的检测抗体,用于检测婴幼儿配方奶粉（Powdered infant formula,PIF）中的C.muytjensii。结果表明,采用80 nm Au NFs作为信号放大载体,每个Au NF可以鳌合1.07×10~4个Eu3+,比传统的分子探针高出2-3个数量级。在最优实验条件下,结合免疫磁珠介导的夹心DELFIA方法,以Au NFs作为发光探针实现了PIF中C.muytjensii的超灵敏发光检测。结果显示,该方法具有良好的特异性,且线性范围在4.1×10~2～4.1×10~6cfu/m L之间,满足线性回归方程y=-16.911ln（x）+407.41（R~2=0.9962）。最低检测限（Limit of detection,LOD）为1.2×10~2cfu/m L,较传统的酶联免疫分析方法（Enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA）降低了230倍。加标回收实验结果显示,该方法在批次内和批次间的回收率分别为92.27%～116.79%和93.1%～115.19%,变异系数（Coefficient of variation,CV）分别为4.37%～7.32%和4.76%～8.83%,说明该方法用于定量检测PIF中的C.muytjensii,具有良好的特异性和精密度。在基于M13噬菌体装载纳米酶检测脱氧雪腐镰刀菌烯醇（Deoxynivalenol,DON）的方法学研究中,对具有DON模拟表位的M13噬菌体(M13DON)进行硫醇化修饰,将其作为竞争抗原参与免疫学反应的同时,还可以作为具有过氧化物酶活性的金纳米球的载体。为了提高检测的灵敏度,在M13DON@Au NPs原位生长Ag壳,形成M13DON@Au NPs@Ag复合物以进一步提高过氧化物酶活性。由于M13噬菌体强大的装载能力,M13噬菌体组装的Au NPs@Ag纳米复合材料(M13DON@Au NPs@Ag)显示出比天然辣根过氧化物酶（Horse radish peroxidase,HRP）更高的过氧化氢和四甲基联苯胺（Tetramethylbenzidine,TMB）催化能力（约48倍和105倍）。结果表明,在最优的条件下,以M13DON@Au NPs为显色探针结合银生长策略用于检测玉米中DON,在13.67 pg/m L～300 ng/m L浓度范围内,满足线性回归方程y=-0.069ln（x）+0.5899（R~2=0.992）。其50%竞争抑制浓度(IC50)和LOD分别为2.03 ng/m L和13.67 pg/m L,比传统的基于HRP酶的ELISA方法的低约26倍和947倍(IC50和LOD值分别为52.43 ng/m L和12.95 ng/m L)。该方法的特异性分析和实际样本检测实验表现出良好的特异性和准确性,批次内和批次间加标回收率为104.75%～114.40%和106.25%～110.35%,CV分别为5.27%～11.90%和0.14%～17.34%。此外,与高效液相色谱（High performance liquid chromatography,HPLC）法的检测结果具有良好的一致性。